微生物转化法生产去氢表雄酮工艺条件的优化
| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 1 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 甾体类药物概述 | 第11-12页 |
| 1.2 去氢表雄酮(DHEA)概述 | 第12-13页 |
| 1.3 DHEA的应用 | 第13-14页 |
| 1.3.1 DHEA的保健功能 | 第13页 |
| 1.3.2 DHEA对机体的调节作用 | 第13-14页 |
| 1.4 DHEA生产方法 | 第14-15页 |
| 1.4.1 化学合成法 | 第14页 |
| 1.4.2 微生物转化法 | 第14-15页 |
| 1.5 微生物转化法生产DHEA | 第15-18页 |
| 1.5.1 解除产物抑制的研究 | 第16页 |
| 1.5.2 双相生物转化系统 | 第16页 |
| 1.5.3 DHEA生物转化体系的建立 | 第16-18页 |
| 1.6 研究意义 | 第18页 |
| 1.7 研究内容 | 第18-19页 |
| 2 去氢表雄酮种子培养基的优化 | 第19-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 菌株 | 第19页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第19页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第19-20页 |
| 2.2 培养基配方与培养方法 | 第20页 |
| 2.3 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.3.1 种子培养基成分的优化 | 第20-22页 |
| 2.3.2 菌体生长曲线的测定 | 第22页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第22-28页 |
| 2.4.1 种子培养基的优化 | 第22-27页 |
| 2.4.2 菌体的生长曲线 | 第27-28页 |
| 2.5 本章小结 | 第28-29页 |
| 3 去氢表雄酮生物转化工艺的优化 | 第29-51页 |
| 3.1 材料与方法 | 第29-31页 |
| 3.1.1 菌株 | 第29页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第29-30页 |
| 3.1.3 实验药品 | 第30页 |
| 3.1.4 培养基配方和培养方法 | 第30页 |
| 3.1.5 植物甾醇保护物的制备 | 第30页 |
| 3.1.6 底物和产物的检测方法 | 第30-31页 |
| 3.1.7 产率和转化率的计算方法 | 第31页 |
| 3.2 双相转化体系培养基的优化 | 第31-34页 |
| 3.3 DHEA转化条件的优化 | 第34-36页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第36-49页 |
| 3.4.1 摇瓶双相生物转化培养基的优化 | 第36-44页 |
| 3.4.2 摇瓶转化培养条件的优化 | 第44-49页 |
| 3.5 本章小结 | 第49-51页 |
| 4 去氢表雄酮分离提取的初步研究 | 第51-60页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第51-52页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第51页 |
| 4.1.2 实验药品 | 第51页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第51-52页 |
| 4.2 实验方法 | 第52-53页 |
| 4.2.1 水解的方法 | 第52页 |
| 4.2.2 不同萃取条件对萃取效果的影响 | 第52页 |
| 4.2.3 脱色剂活性炭含量的研究 | 第52-53页 |
| 4.2.4 产品纯度以及提取收率的计算 | 第53页 |
| 4.3 实验结果 | 第53-57页 |
| 4.3.1 水解结果 | 第53页 |
| 4.3.2 萃取条件对萃取效果的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.3 脱色剂活性炭含量的研究 | 第54-55页 |
| 4.3.4 产品纯度以及提取收率的计算 | 第55-57页 |
| 4.4 本章小结 | 第57-60页 |
| 讨论 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 攻读学位期间发表的学术成果目录 | 第68-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
