摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第1章 绪论 | 第11-21页 |
1.1 天然生物酶的概述和优缺点 | 第11页 |
1.2 人工模拟酶的优势与发展 | 第11-17页 |
1.2.1 金属材料 | 第11-12页 |
1.2.2 金属氧化物材料 | 第12-13页 |
1.2.3 碳基材料 | 第13-15页 |
1.2.4 金属有机框架(MOFs)材料 | 第15-16页 |
1.2.5 其他材料 | 第16-17页 |
1.3 基于人工模拟酶光学分析方法简介 | 第17-18页 |
1.3.1 比色法 | 第17页 |
1.3.2 荧光法 | 第17页 |
1.3.3 化学发光法 | 第17-18页 |
1.4 人工模拟酶在生化分析中的应用 | 第18-19页 |
1.4.1 检测金属离子 | 第18页 |
1.4.2 检测过氧化氢和葡萄糖 | 第18-19页 |
1.4.3 生物大分子检测 | 第19页 |
1.5 本课题的研究目标和研究内容 | 第19-21页 |
1.5.1 研究目的 | 第19-20页 |
1.5.2 研究内容 | 第20-21页 |
第2章 Fe_3(PO_4)_2(OH)_2材料的类过氧化物酶效应及其在过氧化氢和葡萄糖比色分析中的应用 | 第21-33页 |
2.1 引言 | 第21-22页 |
2.2 实验部分 | 第22-23页 |
2.2.1 实验试剂与仪器 | 第22页 |
2.2.2 实验方法与步骤 | 第22-23页 |
2.3 结果与讨论 | 第23-31页 |
2.3.1 基于Fe_3(PO_4)_2(OH)_2的过氧化氢传感器的构建和检测机理 | 第23-24页 |
2.3.2 材料的表征 | 第24-26页 |
2.3.3 实验条件的优化 | 第26-27页 |
2.3.4 Fe_3(PO_4)_2(OH)_2模拟酶的酶促反应动力学研究 | 第27-28页 |
2.3.5 基于Fe_3(PO_4)_2(OH)_2的过氧化氢和葡萄糖的比色检测 | 第28-30页 |
2.3.6 检测特异性的评价 | 第30页 |
2.3.7 血清中葡萄糖的检测 | 第30-31页 |
2.4 本章小结 | 第31-33页 |
第3章 MOF材料MIL-53(Fe)的类氧化酶活性研究及在biothiols比色检测中的应用 | 第33-45页 |
3.1 引言 | 第33-34页 |
3.2 实验部分 | 第34-35页 |
3.2.1 实验试剂与实验仪器 | 第34页 |
3.2.2 实验方法与步骤 | 第34-35页 |
3.3 结果与讨论 | 第35-43页 |
3.3.1 基于MIL-53(Fe)的biothiols传感器的构建和检测机理 | 第35-37页 |
3.3.2 材料的表征 | 第37-40页 |
3.3.3 实验条件的优化 | 第40页 |
3.3.4 biothiols的比色检测 | 第40-41页 |
3.3.5 检测特异性的评价 | 第41-42页 |
3.3.6 模拟样品中Cys的比色检测 | 第42页 |
3.3.7 在细胞内biothiols检测中的应用 | 第42-43页 |
3.4 本章小结 | 第43-45页 |
第4章 总结与展望 | 第45-47页 |
4.1 总结 | 第45-46页 |
4.2 展望 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-63页 |
致谢 | 第63-65页 |
硕士期间发表的学术论文 | 第65页 |