| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 1.引言 | 第12-15页 |
| 2.实验一：高糖对足细胞损伤的影响及固本化瘀通络合剂的保护作用 | 第15-23页 |
| 材料与方法 | 第15-20页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-18页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第15页 |
| 2.1.2 实验细胞 | 第15页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第15-16页 |
| 2.1.4 实验药物 | 第16页 |
| 2.1.5 主要实验设备 | 第16-17页 |
| 2.1.6 主要溶液配制 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.2.1 含药血清制备 | 第18-19页 |
| 2.2.2 细胞培养和分组 | 第19页 |
| 2.2.3 流式细胞检测 | 第19-20页 |
| 2.3 统计学方法 | 第20页 |
| 结果 | 第20-22页 |
| 1.足细胞形态学观察 | 第20-21页 |
| 2.流式细胞术检测细胞凋亡 | 第21-22页 |
| 小结 | 第22-23页 |
| 3.实验二:高糖对足细胞自噬的影响及固本化瘀通络合剂对自噬的调控作用 | 第23-40页 |
| 材料和方法 | 第23-31页 |
| 3.1 实验材料 | 第23-27页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第23页 |
| 3.1.2 实验细胞 | 第23页 |
| 3.1.3 主要实验试剂 | 第23-25页 |
| 3.1.4 实验药物 | 第25页 |
| 3.1.5 主要实验设备 | 第25-26页 |
| 3.1.6 实验试剂 | 第26-27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-31页 |
| 3.2.1 含药血清制备 | 第27-28页 |
| 3.2.2 细胞培养和分组 | 第28页 |
| 3.2.3 免疫荧光检测p62 | 第28页 |
| 3.2.4 mRFP-eGFP-LC3荧光双标检测 | 第28页 |
| 3.2.5 Western Blot检测 | 第28-29页 |
| 3.2.6 RT-PCR检测 | 第29-31页 |
| 3.3 统计学方法 | 第31页 |
| 结果 | 第31-38页 |
| 1.mRFP-GFP-LC3荧光双标腺病毒转染检测 | 第31-32页 |
| 2.免疫荧光检测P62水平 | 第32-33页 |
| 3.Western Blot检测LC3、P62和Beclin1的蛋白水平 | 第33-36页 |
| 4.RT-qPCR检测LC3、P62和Beclin1的mRNA水平 | 第36-38页 |
| 小结 | 第38-40页 |
| 4.讨论 | 第40-49页 |
| 1.足细胞损伤是糖尿病肾病发生的关键病理改变 | 第40-42页 |
| 2.细胞自噬异常是糖尿病肾病足细胞损伤的根源 | 第42-46页 |
| 3.固本化瘀通络合法可能通过调控自噬,恢复足细胞形态和功能从而达到防治糖尿病肾病之功效 | 第46-49页 |
| 5.结论 | 第49-50页 |
| 6.本研究的特色与创新之处 | 第50-51页 |
| 7.问题与展望 | 第51-52页 |
| 1.存在的问题 | 第51页 |
| 2.展望 | 第51-52页 |
| 8.致谢 | 第52-53页 |
| 9.参考文献 | 第53-58页 |
| 综述 | 第58-66页 |
| 参考文献 | 第63-66页 |
| 附录 | 第66-67页 |
| 在读期间公开发表的学术论文 | 第66-67页 |
