| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 材料与方法 | 第12-24页 |
| 1.实验材料 | 第12-15页 |
| 1.1 子痫前期临床诊断标准 | 第12页 |
| 1.2 细胞系 | 第12页 |
| 1.3 主要试剂与材料 | 第12-13页 |
| 1.4 主要仪器和设备 | 第13-14页 |
| 1.5 常用缓冲液及配制方法 | 第14-15页 |
| 2.实验方法 | 第15-24页 |
| 2.1 .血液样本收集 | 第15页 |
| 2.2 .滋养细胞上清刺激HUVEC释放EMPs | 第15-17页 |
| 2.3 基因本体(GeneOntology,GO)分析正常氧、缺氧滋养细胞上清中的差异蛋白 | 第17页 |
| 2.4 HMGB1刺激后检测HUVECs释放的EMPs数量 | 第17页 |
| 2.5 HMGB1刺激对妊娠母鼠血浆中的总微粒、内皮微粒数量的影响 | 第17页 |
| 2.6 血浆及HUVEC细胞上清中sFlt-1检测 | 第17-18页 |
| 2.7 HMGB1刺激后检测HUVEC表达Flt-1mRNA的表达 | 第18-20页 |
| 2.8 检测HMGB1刺激后检测HUVEC表达Flt-1蛋白表达 | 第20-22页 |
| 2.9 流式检测血浆中内皮微粒 | 第22-23页 |
| 2.10 统计学分析 | 第23-24页 |
| 结果 | 第24-35页 |
| 1.缺氧滋养细胞上清对血管内皮细胞的作用 | 第24-28页 |
| 1.1 缺氧JEG-3上清诱导HUVECs产生MPs | 第24-25页 |
| 1.2 缺氧JEG-3上清诱导HUVEC细胞产生可溶性Flt-1(sFlt-1) | 第25-26页 |
| 1.3 缺氧JEG-3上清诱导HUVEC细胞产生可溶性Flt-1部分来自于微粒 | 第26-27页 |
| 1.4 缺氧滋养细胞上清中刺激内皮细胞的特异性蛋白 | 第27页 |
| 1.5 基因本体(GeneOntology,Go)分析缺氧滋养细胞上清中的特异性蛋白质 | 第27-28页 |
| 2.重组HMGB1刺激内皮细胞产生微粒以及可溶性Flt-1 | 第28-32页 |
| 2.1 HMGB1促进HUVEC产生微粒 | 第28-29页 |
| 2.2 HMGB1促进内皮细胞Flt-1和sFlt-1的mRNA表达 | 第29-30页 |
| 2.3 HMGB1促进内皮细胞Flt-1和sFlt-1的蛋白表达 | 第30-32页 |
| 3.重组HMGB1对妊娠小鼠的作用 | 第32-33页 |
| 3.1 HMGB1促进妊娠小鼠血浆中微粒的产生 | 第32页 |
| 3.2 HMGB1促进妊娠小鼠血浆中内皮微粒的产生 | 第32-33页 |
| 4.子痫前期患者血浆中的Flt-1与微粒含量异常升高 | 第33-35页 |
| 4.1 子痫前期患者血浆中的Flt-1升高 | 第33-34页 |
| 4.2 子痫前期患者血浆中的微粒升高 | 第34页 |
| 4.3 子痫前期患者血浆中的CD31+Flt-1+微粒升高 | 第34-35页 |
| 讨论 | 第35-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-45页 |
| 综述 | 第45-54页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 硕士学位期间发表的论文 | 第54-55页 |
| 本课题所获基金资助 | 第55-56页 |
| 缩略词表 | 第56-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
