| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第10-18页 |
| 1.1 鱼类骨骼肌 | 第10-11页 |
| 1.1.1 鱼骨骼肌的组成 | 第10页 |
| 1.1.2 鱼骨骼肌的发育 | 第10-11页 |
| 1.2 组蛋白的甲基化修饰 | 第11-13页 |
| 1.2.1 SmyD1概述 | 第12页 |
| 1.2.2 SmyD1与骨骼肌发育 | 第12-13页 |
| 1.3 MicroRNA | 第13-15页 |
| 1.3.1 MicroRNA的定义 | 第13页 |
| 1.3.2 MiRNA的形成 | 第13-14页 |
| 1.3.3 miRNA调控基因表达 | 第14-15页 |
| 1.3.4 MiRNA与骨骼肌 | 第15页 |
| 1.4 蛋白组学 | 第15-16页 |
| 1.4.1 蛋白组学的发展 | 第16页 |
| 1.4.2 蛋白组学应用 | 第16页 |
| 1.5 小RNA基因芯片简介 | 第16-17页 |
| 1.5.1 基因芯片的发展 | 第16-17页 |
| 1.5.2 微流体芯片 | 第17页 |
| 1.5.3 微流体芯片的应用 | 第17页 |
| 1.6 本论文的研究目的及意义 | 第17-18页 |
| 第2章 鳜鱼快、慢肌蛋白组分析 | 第18-35页 |
| 引言 | 第18页 |
| 2.1 材料与方法 | 第18-21页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.1.2 蛋白质提取 | 第18-19页 |
| 2.1.3 蛋白质浓度测量 | 第19页 |
| 2.1.4 蛋白质酶解 | 第19页 |
| 2.1.5 iTRAQ标记 | 第19-20页 |
| 2.1.6 SCX分离 | 第20页 |
| 2.1.7 质谱鉴定和数据分析 | 第20-21页 |
| 2.1.8 差异表达蛋白分析 | 第21页 |
| 2.2 结果与分析 | 第21-33页 |
| 2.2.1 蛋白定量和质控 | 第21-23页 |
| 2.2.2 测序数据总体分析 | 第23-25页 |
| 2.2.3 蛋白的COG注释 | 第25-26页 |
| 2.2.4 快肌和慢肌中差异表达的蛋白质 | 第26-27页 |
| 2.2.5 差异表达蛋白的KEGG通路分析 | 第27-33页 |
| 2.3 讨论 | 第33-34页 |
| 2.4 小结 | 第34-35页 |
| 第3章 鳜鱼快肌和慢肌miRNAs表达分析 | 第35-49页 |
| 3.1 材料与方法 | 第35-41页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第35页 |
| 3.1.2 主要实验试剂 | 第35-36页 |
| 3.1.3 实验所需主要仪器设备 | 第36-37页 |
| 3.1.4 miRNA芯片说明 | 第37页 |
| 3.1.5 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.1.6 miRNA芯片合成和实验流程 | 第39-41页 |
| 3.2 结果 | 第41-47页 |
| 3.2.1 芯片杂交结果图像 | 第41页 |
| 3.2.2 数据分析 | 第41-44页 |
| 3.2.3 miRNA的Real-time CR定量测定 | 第44-47页 |
| 3.2.4 miR103和miR144荧光定量结果分析 | 第47页 |
| 3.3 讨论 | 第47-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 第4章 miR103和miR144靶基因预测及验证 | 第49-63页 |
| 4.1 材料与方法 | 第49-55页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第49页 |
| 4.1.2 MiRNAs靶基因预测 | 第49页 |
| 4.1.3 miR-103和miR-144靶基因验证 | 第49-55页 |
| 4.2 结果与分析 | 第55-61页 |
| 4.2.1 miRNAs靶基因预测 | 第55-57页 |
| 4.2.2 miR-103和miR-144靶基因验证 | 第57-60页 |
| 4.2.3 myomiR-SmyD1调控不同肌纤维性状的预测网路图 | 第60-61页 |
| 4.3 讨论 | 第61-62页 |
| 4.4 小结 | 第62-63页 |
| 第5章 结论与展望 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
