| 缩略词表 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 一、DHA改善胰岛素抵抗的研究现状 | 第14-15页 |
| 二、胰岛素信号传导通路 | 第15页 |
| 三、mTOR/S6K1信号通路与胰岛素抵抗的关系 | 第15-16页 |
| 四、PGC-1α和STARS在胰岛素信号传导中的作用 | 第16-17页 |
| 五、本研究的内容和目的 | 第17-18页 |
| 第一章 高脂条件下鱼油对IR大鼠胰岛素抵抗的影响 | 第18-28页 |
| 1 材料方法 | 第18-23页 |
| 1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.2 实验动物饲料 | 第18页 |
| 1.3 实验分组 | 第18页 |
| 1.4 主要仪器与试剂 | 第18-21页 |
| 1.5 血清生化指标测定 | 第21页 |
| 1.6 蛋白表达分析 | 第21-23页 |
| 2 实验结果 | 第23-25页 |
| 2.1 胰岛素抵抗大鼠模型的构建 | 第23页 |
| 2.2 鱼油饮食干预结果 | 第23-25页 |
| 2.2.1 鱼油和DHA摄入量 | 第23-24页 |
| 2.2.2 胰岛素敏感性 | 第24页 |
| 2.2.3 蛋白表达 | 第24-25页 |
| 3 讨论 | 第25-26页 |
| 4 结论 | 第26-28页 |
| 第二章 DHA对胰岛素抵抗L6细胞胰岛素信号传导通路的影响 | 第28-46页 |
| 1 材料方法 | 第28-35页 |
| 1.1 实验细胞 | 第28页 |
| 1.2 主要仪器与试剂 | 第28-30页 |
| 1.3 基本实验方法 | 第30-31页 |
| 1.4 L6细胞分化鉴定 | 第31页 |
| 1.5 L6细胞造模 | 第31-32页 |
| 1.6 IR-L6DHA干预 | 第32-33页 |
| 1.7 RNA提取 | 第33-35页 |
| 2 实验结果 | 第35-43页 |
| 2.1 IR-L6模型构建 | 第35-37页 |
| 2.1.1 细胞分化结果 | 第35页 |
| 2.1.2 细胞活性检测 | 第35-36页 |
| 2.1.3 不同PA浓度的葡萄糖摄取量 | 第36-37页 |
| 2.1.4 不同PA浓度的蛋白表达 | 第37页 |
| 2.2 DHA干预方式一 | 第37-38页 |
| 2.2.1 细胞活性检测 | 第37-38页 |
| 2.2.2 葡萄糖摄取量 | 第38页 |
| 2.3 DHA干预方式二 | 第38-43页 |
| 2.3.1 细胞活性检测 | 第38页 |
| 2.3.2 葡萄糖摄取量 | 第38-39页 |
| 2.3.3 基因表达 | 第39-40页 |
| 2.3.4 蛋白表达 | 第40-43页 |
| 3 讨论 | 第43-44页 |
| 4 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 附录 | 第50-53页 |
| 个人简历 | 第53-55页 |
| 致谢 | 第55页 |