| 第一部分 自噬在袖状胃切除术治疗2型糖尿病大鼠中的机制研究 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第二部分 EGCG对过氧化氢诱导的α-细胞氧化应激保护作用的研究 | 第7-15页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-15页 |
| 第一部分 自噬在袖状胃切除术治疗2型糖尿病大鼠中的机制研究 | 第15-46页 |
| 第1章 前言 | 第15-29页 |
| 1.1 2型糖尿病的研究背景 | 第15页 |
| 1.2 2型糖尿病的发病原因和机理 | 第15-16页 |
| 1.2.1 环境因素 | 第15-16页 |
| 1.2.2 遗传因素 | 第16页 |
| 1.3 2型糖尿病的治疗方法 | 第16-18页 |
| 1.3.1 二甲双胍 | 第16-17页 |
| 1.3.2 噻唑烷二酮类 | 第17页 |
| 1.3.3 磺酰脲类 | 第17页 |
| 1.3.4 胰高血糖素样肽-1(GLP-1)极其类似物 | 第17页 |
| 1.3.5 针对减轻心血管并发症的药物 | 第17页 |
| 1.3.6 血管紧张素转换酶抑制剂 | 第17页 |
| 1.3.7 他汀类药物 | 第17-18页 |
| 1.3.8 阿司匹林 | 第18页 |
| 1.4 2型糖尿病的影响因素 | 第18-22页 |
| 1.4.1 遗传因素对2型糖尿病的影响 | 第18页 |
| 1.4.2 细胞机制 | 第18-22页 |
| 1.5 减重手术的研究背景 | 第22-23页 |
| 1.5.1 减重手术机制的研究 | 第22页 |
| 1.5.2 减重手术术式 | 第22-23页 |
| 1.6 自噬的研究背景 | 第23-29页 |
| 1.6.1 自噬过程 | 第24-25页 |
| 1.6.2 自噬在肝脏脂代谢中的研究 | 第25-29页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第29-36页 |
| 2.1 动物分组和二型糖尿病模型的建立 | 第29页 |
| 2.1.1 实验动物的分组和喂养 | 第29页 |
| 2.1.2 袖状胃切除术的实施 | 第29页 |
| 2.2 肝脏总蛋白样品的提取 | 第29-30页 |
| 2.3 总蛋白的定量和变性 | 第30页 |
| 2.3.1 BCA法测定蛋白浓度 | 第30页 |
| 2.4 蛋白免疫印迹分析(Western Blot) | 第30-32页 |
| 2.4.1 SDS-PAGE胶的配制 | 第30页 |
| 2.4.2 电泳 | 第30-31页 |
| 2.4.3 转膜 | 第31页 |
| 2.4.4 封闭 | 第31页 |
| 2.4.5 孵育一抗 | 第31页 |
| 2.4.6 孵育二抗 | 第31-32页 |
| 2.4.7 显影 | 第32页 |
| 2.4.8 灰度值分析 | 第32页 |
| 2.5 RT-PCR | 第32-33页 |
| 2.5.1 组织总RNA的提取 | 第32页 |
| 2.5.2 RNA样本浓度的测定 | 第32-33页 |
| 2.5.3 荧光定量PCR | 第33页 |
| 2.5.4 引物序列 | 第33页 |
| 2.6 肝脏组织免疫荧光检测方法 | 第33-35页 |
| 2.6.1 组织的固定 | 第33-34页 |
| 2.6.2 包埋 | 第34页 |
| 2.6.3 切片 | 第34页 |
| 2.6.4 封闭 | 第34页 |
| 2.6.5 孵育一抗 | 第34-35页 |
| 2.6.6 孵育二抗 | 第35页 |
| 2.7 血脂指标的测定 | 第35-36页 |
| 2.7.1 大鼠血清的制备 | 第35页 |
| 2.7.2 血脂指标的检测 | 第35-36页 |
| 第3章 实验结果 | 第36-43页 |
| 3.1 术后肝脏自噬水平的检测 | 第36-39页 |
| 3.1.1 Western Blot验证术后肝脏自噬水平 | 第36页 |
| 3.1.2 免疫荧光验证袖状胃术后肝脏自噬水平 | 第36-37页 |
| 3.1.3 Western Blot验证Bcl-xL的表达 | 第37-38页 |
| 3.1.4 自噬相关基因在实施袖状胃切除术后大鼠肝脏中的表达情况 | 第38-39页 |
| 3.2 血脂指标的检测 | 第39-41页 |
| 3.3 脂肪酶的检测 | 第41-43页 |
| 第4章 讨论 | 第43-45页 |
| 第5章 结论 | 第45-46页 |
| 第二部分 EGCG对过氧化氢诱导的α-细胞氧化应激保护作用的研究 | 第46-58页 |
| 第1章 前言 | 第46-49页 |
| 1.1 糖尿病合并低血糖 | 第46页 |
| 1.2 EGCG功能的研究背景 | 第46-47页 |
| 1.2.1 抗氧化作用 | 第46-47页 |
| 1.2.2 对代谢的影响 | 第47页 |
| 1.2.3 EGCG的抗炎作用 | 第47页 |
| 1.3 自由基研究背景 | 第47-48页 |
| 1.4 氧化应激研究背景 | 第48页 |
| 1.5 机体中自由基的产生和氧化应激 | 第48-49页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第49-51页 |
| 2.1 细胞培养 | 第49页 |
| 2.2 ROS检测 | 第49页 |
| 2.3 细胞活力检测 | 第49页 |
| 2.4 胰高血糖素分泌的检测 | 第49-50页 |
| 2.5 细胞凋亡检测 | 第50页 |
| 2.6 数据统计 | 第50-51页 |
| 第3章 实验结果 | 第51-56页 |
| 3.1 EGCG对过氧化氢处理的α-细胞的细胞活性的影响 | 第51-52页 |
| 3.1.1 活性氧的检测 | 第51页 |
| 3.1.2 细胞活性检测 | 第51-52页 |
| 3.2 胰高血糖素原mRNA的检测 | 第52-54页 |
| 3.3 EGCG和过氧化氢对细胞凋亡的影响 | 第54-56页 |
| 第4章 讨论 | 第56-57页 |
| 第5章 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 附录Ⅰ 在校期间发表的文章 | 第69页 |
