| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 中英文符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-21页 |
| 第一章 瘢痕疙瘩成纤维细胞株的建立 | 第21-27页 |
| 1.1 材料和试剂 | 第21页 |
| 1.2 实验方法 | 第21-24页 |
| 1.2.1 瘢痕疙瘩组织中提取成纤维细胞 | 第21-22页 |
| 1.2.2 组织切片及HE染色 | 第22-23页 |
| 1.2.3 细胞增殖试验 | 第23页 |
| 1.2.4 瘢痕疙瘩成纤维细胞特异性标志物的测定 | 第23-24页 |
| 1.3 结果 | 第24-27页 |
| 1.3.1 瘢痕疙瘩成纤维细胞培养用的组织提取及临床病理特征 | 第24页 |
| 1.3.2 用在瘢痕疙瘩成纤维细胞培养的患者瘢痕疙瘩病灶形态学及组织学特征 | 第24-25页 |
| 1.3.3 原代细胞培养的瘢痕疙瘩细胞株的形态学特征 | 第25-26页 |
| 1.3.4 原代细胞培养瘢痕疙瘩细胞株的增殖特征 | 第26页 |
| 1.3.5 原代细胞培养瘢痕疙瘩细胞株的分子生物学特性 | 第26-27页 |
| 第二章 Pa-PDT治疗瘢痕疙瘩的疗效及机制的影响 | 第27-35页 |
| 2.1 材料和试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.1 材料 | 第27页 |
| 2.1.2 试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-31页 |
| 2.2.1 Pa细胞毒性的测定 | 第28页 |
| 2.2.2 分析细胞Pa-PDT的可行性 | 第28页 |
| 2.2.3 Pa-PDT治疗对瘢痕疙瘩成纤维细胞PCNA及工型胶原蛋白表达的改变 | 第28-29页 |
| 2.2.4 Pa-PDT治疗对瘢痕疙瘩成纤维细胞ROS生成的影响 | 第29页 |
| 2.2.5 Pa-PDT治疗对瘢痕疙瘩成纤维细胞凋亡发生的影响 | 第29页 |
| 2.2.6 Pa-PDT治疗后凋亡相关蛋白的检测 | 第29-30页 |
| 2.2.7 统计学方法 | 第30-31页 |
| 2.3 结果 | 第31-35页 |
| 2.3.1 Pa对原代培养的瘢痕疙瘩成纤维细胞的毒性 | 第31页 |
| 2.3.2 Pa-PDT对原代培养的瘢痕疙瘩成纤维细胞的毒性 | 第31-32页 |
| 2.3.3 Pa-PDT对PCNA及Ⅰ型胶原蛋白表达的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.4 Pa-PDT促使瘢痕疙瘩成纤维细胞ROS生成 | 第33页 |
| 2.3.5 Pa-PDT诱发的瘢痕疙瘩成纤维细胞凋亡检测 | 第33-34页 |
| 2.3.6 经过Pa-PDT瘢痕疙瘩成纤维细胞中凋亡相关蛋白的检测 | 第34-35页 |
| 第三章 RUNX3表达对Pa-PDT治疗瘢痕疙瘩的疗效及机制的影响 | 第35-42页 |
| 3.1 材料和试剂 | 第35页 |
| 3.1.1 材料 | 第35页 |
| 3.1.2 试剂 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.2.1 瘢痕疙瘩成纤维细胞株的选择 | 第35-36页 |
| 3.2.2 利用瘢痕疙瘩成纤维细胞比较RUNX3的表达与Pa-PDT效应之间的相关性 | 第36页 |
| 3.2.3 Pa-PDT对瘢痕疙瘩成纤维细胞RUNX3表达的改变 | 第36页 |
| 3.2.4 利用RUNX3 si-RNA转染RUNX3阳性瘢痕疙瘩成纤维细胞 | 第36-37页 |
| 3.2.5 观察RUNX3 si-RNA转染瘢痕疙瘩成纤维细胞中Pa-PDT效应的改变 | 第37页 |
| 3.2.6 统计学方法 | 第37-38页 |
| 3.3 结果 | 第38-42页 |
| 3.3.1 瘢痕疙瘩成纤维细胞中检测RUNX3的表达 | 第38页 |
| 3.3.2 瘢痕疙瘩成纤维细胞中RUNX3的表达与Pa-PDT效应的影响 | 第38-40页 |
| 3.3.3 Pa-PDT对瘢痕疙瘩成纤维细胞RUNX3表达的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.4 针对RUNX3的小干扰RNA进行对RUNX3 mRNA表达进行下调 | 第41页 |
| 3.3.5 下调RUNX3 mRNA表达对Pa-PDT效应的影响 | 第41-42页 |
| 第四章 RUNX3表达在瘢痕疙瘩发病过程中的作用 | 第42-48页 |
| 4.1 材料和试剂 | 第42页 |
| 4.1.1 材料 | 第42页 |
| 4.1.2 试剂 | 第42页 |
| 4.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 4.2.1 外科手术样本的免疫组织化学 | 第42-43页 |
| 4.2.2 检测下调RUNX3 mRNA表达的瘢痕疙瘩成纤维细胞中PCNA的表达 | 第43页 |
| 4.2.3 统计学方法 | 第43-44页 |
| 4.3 结果 | 第44-48页 |
| 4.3.1 瘢痕疙瘩患者的临床病理特征 | 第44-45页 |
| 4.3.2 正常皮肤组织中RUNX3蛋白表达 | 第45页 |
| 4.3.3 瘢痕疙瘩组织样本中RUNX3蛋白表达 | 第45-46页 |
| 4.3.4 瘢痕疙瘩组织样本中RUNX3蛋白表达与患者临床症状之间的关系 | 第46页 |
| 4.3.5 瘢痕疙瘩组织样本中PCNA的表达 | 第46-47页 |
| 4.3.6 瘢痕疙瘩组织样本中RUNX3蛋白表达与PCNA表达的相关性 | 第47页 |
| 4.3.7 下调RUNX3 mRNA表达对PCNA表达的影响 | 第47-48页 |
| 第五章 瘢痕疙瘩裸鼠动物模型的建立与评估 | 第48-54页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第48页 |
| 5.1.1 材料 | 第48页 |
| 5.1.2 仪器 | 第48页 |
| 5.2 实验方法 | 第48-51页 |
| 5.2.1 细胞培养 | 第48-49页 |
| 5.2.2 细胞处理 | 第49页 |
| 5.2.3 细胞接种 | 第49页 |
| 5.2.4 瘢痕疙瘩组织块移植 | 第49页 |
| 5.2.5 病理检查 | 第49-50页 |
| 5.2.6 统计学处理 | 第50-51页 |
| 5.3 结果 | 第51-54页 |
| 5.3.1 细胞接种成瘤情况 | 第51-52页 |
| 5.3.2 瘢痕疙瘩组织移植成瘤情况 | 第52页 |
| 5.3.3 瘢痕疙瘩组织大体观察 | 第52-53页 |
| 5.3.4 组织病理学检查 | 第53-54页 |
| 讨论 | 第54-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 综述 | 第66-92页 |
| 参考文献 | 第86-92页 |
| 附录A：攻读学位期间发表的论文 | 第92-93页 |
| 附录B：攻读学位期间的科研成果 | 第93-94页 |
| 附录C：攻读学位期间参加的学术活动 | 第94页 |
