| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 英文缩写表 | 第12-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-23页 |
| 1 肽聚糖的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1 肽聚糖的化学组成与结构特点 | 第13-14页 |
| 1.2 肽聚糖的生物合成与代谢 | 第14页 |
| 1.2.1 肽聚糖的生物合成 | 第14页 |
| 1.2.2 肽聚糖的生物代谢 | 第14页 |
| 1.3 肽聚糖的分离提取 | 第14-15页 |
| 1.4 肽聚糖的生物学活性及功能 | 第15-17页 |
| 1.4.1 免疫调节作用 | 第15-16页 |
| 1.4.2 抗肿瘤作用 | 第16页 |
| 1.4.3 其他活性 | 第16-17页 |
| 2 禽抗菌肽的研究进展 | 第17-19页 |
| 2.1 抗菌肽简介 | 第17页 |
| 2.2 禽抗菌肽的种类 | 第17-18页 |
| 2.3 禽抗菌肽的功能 | 第18-19页 |
| 3 益生菌与抗菌肽的关系 | 第19-20页 |
| 4 本论文研究目的、研究意义、研究内容及技术路线 | 第20-23页 |
| 4.1 研究目的、意义及内容 | 第20-22页 |
| 4.2 技术路线 | 第22-23页 |
| 第二部分 试验部分 | 第23-60页 |
| 试验一 鼠李糖乳杆菌MLGA细胞壁完整肽聚糖的提取及鉴定 | 第23-32页 |
| 1 材料与方法 | 第23-26页 |
| 1.1 试验材料 | 第23-25页 |
| 1.1.1 试验菌株 | 第23-24页 |
| 1.1.2 主要试验仪器设备 | 第24页 |
| 1.1.3 细菌培养基 | 第24-25页 |
| 1.1.4 主要试剂 | 第25页 |
| 1.1.5 试剂配制 | 第25页 |
| 1.2 试验方法与步骤 | 第25-26页 |
| 1.2.1 鼠李糖乳杆菌MLGA的活化培养 | 第25页 |
| 1.2.2 鼠李糖乳杆菌MLGA细胞壁完整肽聚糖的分离提取 | 第25-26页 |
| 1.2.3 肽聚糖形态观察 | 第26页 |
| 1.2.4 氨基酸分析测定 | 第26页 |
| 1.2.5 溶菌酶溶解试验 | 第26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-30页 |
| 2.1 肽聚糖鉴定结果 | 第26-30页 |
| 2.1.1 肽聚糖形态观察 | 第26-28页 |
| 2.1.2 乳杆菌及肽聚糖氨基酸组分分析 | 第28-30页 |
| 2.1.3 溶菌酶消化试验结果 | 第30页 |
| 3 讨论 | 第30-31页 |
| 4 小结 | 第31-32页 |
| 试验二 鼠李糖乳杆菌MLGA细胞壁完整肽聚糖对鸡免疫细胞及肠组织β-防御素9基因表达的影响 | 第32-53页 |
| 1 材料与方法 | 第33-40页 |
| 1.1 试验材料 | 第33-34页 |
| 1.1.1 试验动物 | 第33页 |
| 1.1.2 主要试验仪器设备 | 第33页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第33-34页 |
| 1.1.4 试剂配制 | 第34页 |
| 1.2 试验方法与步骤 | 第34-40页 |
| 1.2.1 免疫细胞和肠组织的分离与培养 | 第34-36页 |
| 1.2.2 各免疫细胞及肠组织与鼠李糖乳杆菌MLGA细胞壁完整肽聚糖共培养及AvBD9 m RNA表达的检测 | 第36-37页 |
| 1.2.3 鼠李糖乳杆菌细胞壁完整肽聚糖与其酶解产物、金黄色葡萄球菌肽聚糖对AvBD9基因表达作用的差异 | 第37页 |
| 1.2.4 鼠李糖乳杆菌细胞壁完整肽聚糖及其酶解产物对炎症细胞因子IL-1β、IL-8 和IL-12p40 m RNA表达的影响 | 第37页 |
| 1.2.5 细胞总RNA的提取 | 第37-38页 |
| 1.2.6 细胞总RNA逆转录 | 第38页 |
| 1.2.7 实时荧光定量RT-PCR | 第38-40页 |
| 1.3 数据处理及统计分析 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-49页 |
| 2.1 细胞总RNA的提取 | 第40-41页 |
| 2.2 鼠李糖乳杆菌细胞壁完整肽聚糖刺激时间对细胞AvBD9 mRNA表达水平的影响 | 第41页 |
| 2.3 鼠李糖乳杆菌细胞壁完整肽聚糖刺激浓度对细胞AvBD9 mRNA表达水平的影响 | 第41-42页 |
| 2.4 不同浓度鼠李糖乳杆菌细胞壁完整肽聚糖对鸡胚肠组织AvBD9 mRNA表达水平的影响 | 第42-43页 |
| 2.5 鼠李糖乳杆菌细胞壁完整肽聚糖与其酶解产物、金黄色葡萄球菌肽聚糖对AvBD9基因表达的影响 | 第43-45页 |
| 2.6 鼠李糖乳杆菌细胞壁完整肽聚糖及其酶解产物对鸡外周血单个核细胞炎症细胞因子IL-1β、IL-8 和IL-12p40基因mRNA表达的影响 | 第45-47页 |
| 2.7 鼠李糖乳杆菌细胞壁完整肽聚糖及其酶解产物对鸡脾细胞炎症细胞因子IL-1β、IL-8 和IL-12p40基因mRNA表达的影响 | 第47-49页 |
| 3 讨论 | 第49-52页 |
| 4 小结 | 第52-53页 |
| 试验三 细胞裂解液及其培养上清抗菌活性的检测 | 第53-60页 |
| 1 材料与方法 | 第53-55页 |
| 1.1 试验材料 | 第53-54页 |
| 1.1.1 试验菌株 | 第53页 |
| 1.1.2 细菌培养基 | 第53-54页 |
| 1.1.3 主要试验仪器设备 | 第54页 |
| 1.1.4 主要试剂 | 第54页 |
| 1.2 试验方法与步骤 | 第54-55页 |
| 1.2.1 肠炎沙门氏菌的活化 | 第54-55页 |
| 1.2.2 肠炎沙门氏菌的培养 | 第55页 |
| 1.2.3 细胞裂解液及其培养上清抗菌活性的检测 | 第55页 |
| 1.3 数据处理及统计分析 | 第55页 |
| 2 结果与分析 | 第55-58页 |
| 2.1 肽聚糖抗菌活性的检测 | 第55-56页 |
| 2.2 细胞上清抗菌活性的检测 | 第56-57页 |
| 2.3 细胞裂解液抗菌活性的检测 | 第57-58页 |
| 3 讨论 | 第58-59页 |
| 4 小结 | 第59-60页 |
| 全文总结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
