| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第11-14页 |
| 1 引言 | 第14-20页 |
| 1.1 肝纤维化及其研究现状 | 第14-15页 |
| 1.2 肝星状细胞在肝纤维化逆转中的作用 | 第15-16页 |
| 1.3 细胞的凋亡途径 | 第16-18页 |
| 1.4 本文立论依据以及前期基础 | 第18-19页 |
| 1.5 小结 | 第19-20页 |
| 2 青霉呋喃酮A对TGF-β1活化的两株肝星状细胞的凋亡作用 | 第20-32页 |
| 2.1 前言 | 第20-22页 |
| 2.1.1 细胞凋亡的形态学和生物化学改变及其检测方法 | 第20-21页 |
| 2.1.2 本小节研究方法 | 第21-22页 |
| 2.2 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.2.1 实验细胞 | 第22页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第22页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.4 主要试剂配制 | 第23-24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第24-25页 |
| 2.3.2 细胞活性试验 | 第25页 |
| 2.3.3 Hoechst荧光染色 | 第25-26页 |
| 2.3.4 流式细胞术 | 第26页 |
| 2.3.5 DNALadder检测 | 第26-27页 |
| 2.4 实验结果 | 第27-30页 |
| 2.4.1 PFA对正常肝细胞和肝星状细胞活力的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.2 PFA对TGF-β1诱导活化的两株HSCs形态学变化的影响 | 第28页 |
| 2.4.3 PFA对TGF-β1诱导活化的HSCs凋亡程度的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.4 PFA处理TGF-β1诱导下HSCs的DNA片段化情况 | 第29-30页 |
| 2.5 讨论 | 第30-32页 |
| 3 青霉呋喃酮A诱导TGF-β1活化的肝星状细胞凋亡分子机制研究 | 第32-54页 |
| 3.1 前言 | 第32-33页 |
| 3.1.1 内质网介导的细胞凋亡途径 | 第32-33页 |
| 3.1.2 本小节研究方法 | 第33页 |
| 3.2 实验材料 | 第33-38页 |
| 3.2.1 细胞株 | 第33页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.3 一抗来源 | 第34-36页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第36页 |
| 3.2.5 主要试剂配制 | 第36-38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-43页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第38页 |
| 3.3.2 细胞总蛋白提取 | 第38页 |
| 3.3.3 线粒体提取 | 第38-39页 |
| 3.3.4 免疫印迹分析 | 第39-40页 |
| 3.3.5 mRNA提取 | 第40-41页 |
| 3.3.6 RT-PCR逆转录 | 第41页 |
| 3.3.7 PCR引物 | 第41-42页 |
| 3.3.8 PCR | 第42-43页 |
| 3.3.9 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第43页 |
| 3.3.10 PAGE凝胶银染 | 第43页 |
| 3.3.11 统计学分析 | 第43页 |
| 3.4 实验结果 | 第43-50页 |
| 3.4.1 PFA诱导TGF-β1活化的HSCs细胞中凋亡效应分子的表达 | 第43-44页 |
| 3.4.2 PFA对TGF-β1诱导活化的HSCs中PERK/eIF2α/ATF4通路、ATF6通路无明显影响 | 第44-46页 |
| 3.4.3 PFA对TGF-β1诱导活化的HSCs中的IRE1α/XBP1通路无明显影响 | 第46页 |
| 3.4.4 PFA激活TGF-β1诱导活化的HSCs中的IRE1α介导的ASK1/JNK/P38通路 | 第46-48页 |
| 3.4.5 PFA激活TGF-β1诱导活化的HSCs中的内质网介导的CHOP凋亡途径 | 第48页 |
| 3.4.6 PFA激活TGF-β1诱导活化的HSCs中的内质网凋亡途径与线粒体凋亡途径有联系 | 第48-49页 |
| 3.4.7 PFA激活TGF-β1诱导活化的HSCs中的内质网介导的caspase12凋亡途径 | 第49-50页 |
| 3.5 讨论 | 第50-54页 |
| 4 全文总结 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 个人简历、在校期间发表的学术论文及取得的研究成果 | 第62-63页 |
