| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 1.文献综述 | 第13-31页 |
| 1.1 茉莉酸 | 第14-18页 |
| 1.1.1 茉莉酸生物合成及其调控 | 第14-15页 |
| 1.1.2 茉莉酸信号转导 | 第15-17页 |
| 1.1.3 茉莉酸和植物抗逆性 | 第17-18页 |
| 1.2 水杨酸 | 第18-22页 |
| 1.2.1 水杨酸的合成 | 第19页 |
| 1.2.2 水杨酸与植物抗逆性 | 第19-21页 |
| 1.2.3 水杨酸是一种植物内源抗性信号 | 第21-22页 |
| 1.3 乙烯 | 第22-26页 |
| 1.3.1 乙烯的生物合成 | 第23页 |
| 1.3.2 乙烯信号转导 | 第23-24页 |
| 1.3.3 乙烯与植物抗病性 | 第24-26页 |
| 1.4 茉莉酸、水杨酸和乙烯之间的相互作用 | 第26-29页 |
| 1.4.1 茉莉酸和水杨酸的相互作用 | 第26-27页 |
| 1.4.2 乙烯和水杨酸、茉莉酸信号转导途径的互作 | 第27-29页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第29-31页 |
| 2.材料与方法 | 第31-80页 |
| 2.1 植物材料和菌株 | 第31页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第31页 |
| 2.1.2 菌株 | 第31页 |
| 2.2 主要试剂、仪器和培养基 | 第31-35页 |
| 2.2.1 抗生素 | 第31页 |
| 2.2.2 酶和试剂 | 第31-32页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第32页 |
| 2.2.4 主要培养基 | 第32-35页 |
| 2.3 本研究所用引物 | 第35-36页 |
| 2.4 实验方法 | 第36-80页 |
| 2.4.1 拟南芥的栽培及处理 | 第36-37页 |
| 2.4.2 RNA的提取与纯化 | 第37-39页 |
| 2.4.3 实时定量PCR检测相关基因的表达量 | 第39-40页 |
| 2.4.4 EIN 3 基因的克隆 | 第40-44页 |
| 2.4.5 35S:EIN 3:LUC载体的构建 | 第44-46页 |
| 2.4.6 ORA 59基因的克隆 | 第46-48页 |
| 2.4.7 35S:ORA 59:LUC载体的构建 | 第48-50页 |
| 2.4.8 农杆菌感受态细胞制备 | 第50页 |
| 2.4.9 农杆菌感受态细胞的转化 | 第50-51页 |
| 2.4.10 农杆菌介导浸染拟南芥 | 第51-54页 |
| 2.4.11 农杆菌介导的烟草瞬时转化 | 第54-55页 |
| 2.4.12 蛋白质相互作用 | 第55-75页 |
| 2.4.13 26S蛋白酶体抑制实验 | 第75-78页 |
| 2.4.14 β-葡萄糖苷酶(GUS)组织化学染色 | 第78-80页 |
| 3.结果 | 第80-100页 |
| 3.1 JA对PDF 1.2表达的诱导作用和SA对PDF 1.2表达的抑制作用依赖于EIN 3/EIL 1 | 第80-85页 |
| 3.2 SA介导的对ORA 59蛋白质稳定性的减弱依赖于EIN 3/EIL 1 | 第85-90页 |
| 3.3 EIN 3和ORA 59共定位于细胞核并且它们之间存在蛋白质-蛋白质相互作用 | 第90-94页 |
| 3.4 EIN 3和ORA 59的蛋白互作介导了ORA 59蛋白质的降解 | 第94-97页 |
| 3.5 SA介导调节了EIN 3的蛋白丰度 | 第97-100页 |
| 4.讨论和结论 | 第100-107页 |
| 4.1 讨论 | 第100-105页 |
| 4.2 结论 | 第105-107页 |
| 5.参考文献 | 第107-119页 |
| 6.致谢 | 第119-120页 |
| 7.博士期间发表论文 | 第120页 |
