黑龙江野生黑木耳种质资源的SSR分析
| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 1 前言 | 第11-26页 |
| 1.1 黑木耳概述 | 第11-15页 |
| 1.1.1 概况 | 第11页 |
| 1.1.2 黑木耳生物学特性 | 第11-12页 |
| 1.1.3 黑木耳应用价值 | 第12-14页 |
| 1.1.4 木耳栽培技术 | 第14-15页 |
| 1.2 黑木耳种质资源分析方法及研究进展 | 第15-24页 |
| 1.2.1 传统生物学方法 | 第16-17页 |
| 1.2.2 生化标记 | 第17页 |
| 1.2.3 细胞学标记法 | 第17-18页 |
| 1.2.4 DNA分子标记 | 第18-24页 |
| 1.3 分子身份证的研究 | 第24-25页 |
| 1.4 本研究的目的意义 | 第25-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-29页 |
| 2.1.1 供试菌株 | 第26-27页 |
| 2.1.2 SSR引物 | 第27-28页 |
| 2.1.3 培养基 | 第28页 |
| 2.1.4 药品及所需溶液的配置 | 第28-29页 |
| 2.1.5 仪器与设备 | 第29页 |
| 2.2 菌种的分离培养与基因组DNA提取 | 第29-31页 |
| 2.2.1 菌种的分离 | 第29-30页 |
| 2.2.2 菌丝体的培养及菌丝收集 | 第30页 |
| 2.2.3 基因组DNA提取与检测 | 第30-31页 |
| 2.3 SSR分子标记进行种质资源分析 | 第31-34页 |
| 2.3.1 SSR引物筛选 | 第31-32页 |
| 2.3.2 SSR-PCR条件设定与优化 | 第32页 |
| 2.3.3 退火温度的筛选 | 第32-33页 |
| 2.3.4 PCR反应体系稳定性的检测 | 第33页 |
| 2.3.5 SSR-PCR | 第33页 |
| 2.3.6 产物检测 | 第33页 |
| 2.3.7 数据处理 | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-55页 |
| 3.1 菌种分离 | 第34页 |
| 3.2 基因组DNA提取 | 第34页 |
| 3.3 紫外分光光度计检测分析 | 第34-35页 |
| 3.4 SSR-PCR引物筛选 | 第35页 |
| 3.5 SSR-PCR条件优化 | 第35-38页 |
| 3.5.1 模板DNA浓度优化 | 第35页 |
| 3.5.2 TaqDNA聚合酶浓度优化 | 第35-36页 |
| 3.5.3 引物浓度优化 | 第36页 |
| 3.5.4 dNTPs浓度的优化 | 第36-37页 |
| 3.5.5 MgCl_2浓度优化 | 第37页 |
| 3.5.6 循环次数的优化 | 第37页 |
| 3.5.7 退火温度的选择 | 第37-38页 |
| 3.6 SSR-PCR结果 | 第38-46页 |
| 3.7 SSR-PCR结果数据处理 | 第46-52页 |
| 3.7.1 菌株间遗传相似系数 | 第46-47页 |
| 3.7.2 UPGMA聚类分析 | 第47-49页 |
| 3.7.3 PCO分析 | 第49-50页 |
| 3.7.4 种质资源的特异性指数分析 | 第50-51页 |
| 3.7.5 平均遗传距离和平均遗传相似系数分析 | 第51-52页 |
| 3.8 分子身份证的构建 | 第52-55页 |
| 4 讨论 | 第55-58页 |
| 4.1 DNA提取方法 | 第55页 |
| 4.2 SSR分子标记 | 第55-56页 |
| 4.3 SSR-PCR反应条件的优化 | 第56-57页 |
| 4.4 种质资源分析方法 | 第57页 |
| 4.5 分子身份证 | 第57-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第68页 |
