| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第9-29页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 壳聚糖及其理化性质 | 第9-10页 |
| 1.3 壳聚糖/DNA复合物转染效率的影响因素 | 第10-15页 |
| 1.3.1 分子量 | 第11-12页 |
| 1.3.2 脱乙酰度 | 第12页 |
| 1.3.3 电荷比 | 第12-13页 |
| 1.3.4 pH值 | 第13-14页 |
| 1.3.5 细胞种类 | 第14页 |
| 1.3.6 其他影响因素 | 第14页 |
| 1.3.7 小结 | 第14-15页 |
| 1.4 壳聚糖衍生物作为基因载体的研究进展 | 第15-20页 |
| 1.4.1 单一修饰 | 第15-19页 |
| 1.4.2 多重修饰 | 第19-20页 |
| 1.4.3 小结 | 第20页 |
| 1.5 选题指导思想 | 第20-22页 |
| 参考文献 | 第22-29页 |
| 第二章 聚乙二醇接枝季铵化壳聚糖的合成及其作为基因载体的应用 | 第29-47页 |
| 2.1 引言 | 第29-30页 |
| 2.2 实验部分 | 第30-34页 |
| 2.2.1 实验试剂及实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第31-34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-43页 |
| 2.3.1 PHTAC的结构表征 | 第35-38页 |
| 2.3.2 凝胶电泳阻滞实验 | 第38-39页 |
| 2.3.3 zeta电势与粒径测定 | 第39-40页 |
| 2.3.4 透射电子显微镜(TEM)表征 | 第40-41页 |
| 2.3.5 细胞毒性实验 | 第41-42页 |
| 2.3.6 细胞转染实验 | 第42-43页 |
| 2.4 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 第三章 精氨酸修饰季铵化壳聚糖的合成及其作为基因载体的应用 | 第47-63页 |
| 3.1 引言 | 第47-48页 |
| 3.2 实验部分 | 第48-51页 |
| 3.2.1 实验试剂及实验仪器 | 第48-49页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第49-51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-60页 |
| 3.3.1 Arg-HTAC的制备与表征 | 第51-55页 |
| 3.3.2 凝胶电泳阻滞实验 | 第55-56页 |
| 3.3.3 zeta电势与粒径测定 | 第56-57页 |
| 3.3.4 透射电子显微镜表征 | 第57-58页 |
| 3.3.5 细胞毒性实验 | 第58-59页 |
| 3.3.6 细胞转染实验 | 第59-60页 |
| 3.4 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-63页 |
| 第四章 精氨酸修饰的聚乙烯亚胺壳聚糖的合成及其作为基因载体的应用 | 第63-78页 |
| 4.1 引言 | 第63-64页 |
| 4.2 实验部分 | 第64-66页 |
| 4.2.1 实验试剂及实验仪器 | 第64页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第64-66页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第66-75页 |
| 4.3.1 CS-PEI-Arg的结构表征 | 第67-69页 |
| 4.3.2 凝胶电泳阻滞实验 | 第69-70页 |
| 4.3.3 zeta电势与粒径测定 | 第70-71页 |
| 4.3.4 透射电子显微镜表征 | 第71-72页 |
| 4.3.5 细胞毒性实验 | 第72-74页 |
| 4.3.6 细胞转染实验 | 第74-75页 |
| 4.4 结论 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-78页 |
| 全文总结与展望 | 第78-79页 |
| 在学期间的研究成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
