摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
1 引言 | 第10-12页 |
2 仪器、试剂、材料与方法 | 第12-22页 |
2.1 主要仪器 | 第12页 |
2.2 主要试剂 | 第12-13页 |
2.3 主要试剂的配制 | 第13-16页 |
2.4 动物模型的建立及分组 | 第16-17页 |
2.4.1 阿尔茨海默病模型 | 第16页 |
2.4.2 建立2型糖尿病模型 | 第16-17页 |
2.4.3 动物分组 | 第17页 |
2.5 行为学检测 | 第17-18页 |
2.6 免疫组织化学染色 | 第18页 |
2.7 BrdU标记增殖细胞技术 | 第18-19页 |
2.8 Western blotting检测海马组织细胞内MAPLC3和Beclin-1 蛋白表达量 | 第19页 |
2.9 透射电镜标本的制作 | 第19-20页 |
2.10 统计学处理 | 第20-22页 |
3 结果 | 第22-34页 |
3.1 阿尔茨海默病合并2型糖尿病对小鼠学习记忆力的影响 | 第22-23页 |
3.2 阿尔茨海默病合并2型糖尿病与胰岛素抵抗及胰岛素受体底物的改变 | 第23-25页 |
3.3 阿尔茨海默病合并2型糖尿病与细胞增殖和氧化应激损伤的改变 | 第25-28页 |
3.4 阿尔茨海默病合并2型糖尿病与自噬的改变 | 第28-34页 |
3.4.1 分别在光镜和电镜下观察阿尔茨海默病合并2型糖尿病时自噬的改变 | 第28-30页 |
3.4.2 自噬在各组中的Western blot检测结果 | 第30-34页 |
4 讨论 | 第34-38页 |
4.1 阿尔茨海默病合并2型糖尿病引发认知功能障碍和胰岛素抵抗的形成 | 第34页 |
4.2 阿尔茨海默病合并2型糖尿病诱导氧化应激,抑制神经细胞增殖 | 第34-36页 |
4.3 阿尔茨海默病合并2型糖尿病诱导细胞自噬上调 | 第36页 |
4.4 氧化应激抑制细胞增殖,诱导自噬的发生 | 第36-38页 |
5 结论 | 第38-40页 |
6 参考文献 | 第40-42页 |
7 附图及图版说明 | 第42-46页 |
综述 | 第46-56页 |
参考文献 | 第52-56页 |
附录 缩略词 | 第56-58页 |
致谢 | 第58-60页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第60-61页 |