| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第11-18页 |
| 1.1 虎杖概况 | 第11-12页 |
| 1.2 白藜芦醇的性质及其合成途径 | 第12-13页 |
| 1.2.1 白藜芦醇的生物特性 | 第12页 |
| 1.2.2 白藜芦醇的合成 | 第12-13页 |
| 1.3 白藜芦醇合成酶的性质 | 第13-14页 |
| 1.4 白藜芦醇诱导途径的研究 | 第14-15页 |
| 1.4.1 生物诱导途径研究 | 第14页 |
| 1.4.2 非生物途径诱导研究状况 | 第14-15页 |
| 1.5 紫外线诱导在其他研究中的应用状况 | 第15页 |
| 1.6 植物组织培养辅助诱导 | 第15-16页 |
| 1.7 活性氧的研究概况 | 第16页 |
| 1.8 白藜芦醇合成酶的基因方面的研究 | 第16-17页 |
| 1.9 RT-PCR检测基因表达水平的研究状况 | 第17页 |
| 1.10 研究方式与意义 | 第17-18页 |
| 2. 材料与方法 | 第18-22页 |
| 2.1 试验材料 | 第18页 |
| 2.2 虎杖愈伤组织的培养 | 第18页 |
| 2.3 愈伤组织的诱导处理 | 第18页 |
| 2.4 不同取样时间 | 第18-19页 |
| 2.5 愈伤组织中H_2O_2的测定 | 第19页 |
| 2.6 培养基中添加H_2O_2和H_2O_2淬灭剂 | 第19-20页 |
| 2.6.1 培养基中H_2O_2的添加 | 第19页 |
| 2.6.2 培养基中H_2O_2淬灭剂的添加 | 第19-20页 |
| 2.7 虎杖愈伤组织形态变化的观察 | 第20页 |
| 2.8 愈伤组织中白藜芦醇的提取及测定 | 第20页 |
| 2.9 白藜芦醇线性关系的确定 | 第20-21页 |
| 2.10 RNA的提取及纯度检验 | 第21页 |
| 2.11 一步法RT-PCR扩增 | 第21-22页 |
| 2.12 电泳结果处理 | 第22页 |
| 3. 结果分析 | 第22-29页 |
| 3.1 不同时间紫外线照射对虎杖愈伤组织H_2O_2含量及其形态变化的影响 | 第22-25页 |
| 3.1.1 短时间取样组中愈伤组织H_2O_2含量的变化 | 第22-23页 |
| 3.1.2 长时间取样组中愈伤组织H_2O_2含量变化 | 第23-24页 |
| 3.1.3 不同时间紫外线照射对虎杖愈伤组织H_2O_2含量的影响 | 第24页 |
| 3.1.4 不同时间紫外线照射后愈伤组织形态变化 | 第24-25页 |
| 3.2 不同时间紫外线照射和不同取样时间对虎杖愈伤组织中RES含量影响 | 第25-26页 |
| 3.3 外加H_2O_2组中愈伤组织中RES含量的变化 | 第26页 |
| 3.4 外加H_2O_2淬灭剂的愈伤组织中RES含量的变化 | 第26-27页 |
| 3.5 分别添加H_2O_2和H_2O_2淬灭剂后愈伤组织形态的变化 | 第27页 |
| 3.6 紫外线照射后愈伤组织中H_2O_2含量变化与RES含量变化之间关系 | 第27-28页 |
| 3.7 RS基因表达水平的分子水平检测 | 第28-29页 |
| 3.7.1 愈伤组织总RNA提取结果 | 第28页 |
| 3.7.2 RT-PCR检测结果 | 第28-29页 |
| 4 讨论 | 第29-34页 |
| 4.1 不同时间紫外线照射对H_2O_2含量的影响 | 第29-30页 |
| 4.2 不同时间紫外线照射对RES含量的影响 | 第30-31页 |
| 4.3 不同取样时间对H_2O_2和RES含量变化的影响 | 第31页 |
| 4.4 H_2O_2含量变化对白藜芦醇含量变化的影响 | 第31-32页 |
| 4.5 外加H_2O_2、H_2O_2淬灭剂与虎杖愈伤组织中RES含量的关系 | 第32-33页 |
| 4.6 RS基因表达水平的RT-PCR检测 | 第33-34页 |
| 5.结论 | 第34-35页 |
| 5.1 紫外线诱导虎杖愈伤组织 | 第34页 |
| 5.2 从分子水平上来探讨白藜芦醇合成酶在紫外线诱导后的表达 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-41页 |
| 附图 | 第41-43页 |
| 致谢 | 第43页 |
