| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-14页 |
| 1.1 课题来源、研究的目的和意义 | 第11-12页 |
| 1.2 国内外研究概况 | 第12-13页 |
| 1.2.1 国外研究概况 | 第12-13页 |
| 1.2.2 国内研究概况 | 第13页 |
| 1.3 论文的主要研究内容 | 第13-14页 |
| 第二章 材料和方法 | 第14-24页 |
| 2.1 材料 | 第14-18页 |
| 2.1.1 胶质瘤组织标本 | 第14页 |
| 2.1.2 细胞 | 第14页 |
| 2.1.3 siRNA | 第14页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第14-17页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.2 方法 | 第18-24页 |
| 2.2.1 WB步骤 | 第18-19页 |
| 2.2.2 石蜡切片的免疫组化 | 第19-20页 |
| 2.2.3 胶质瘤细胞株的培养 | 第20-21页 |
| 2.2.4 饥饿释放试验 | 第21页 |
| 2.2.5 脂质体Lipofectamine 2000 转染细胞 | 第21页 |
| 2.2.6 流式细胞仪检测细胞周期和细胞凋亡 | 第21-22页 |
| 2.2.7 CCK-8 法检测细胞增殖活性 | 第22页 |
| 2.2.8 克隆形成试验 | 第22-23页 |
| 2.2.9 细胞划痕试验 | 第23页 |
| 2.2.10 Transwell迁移实验 | 第23页 |
| 2.2.11 统计分析 | 第23-24页 |
| 第三章 结果 | 第24-34页 |
| 3.1 CHD1L在胶质瘤组织中的表达 | 第24-25页 |
| 3.1.1 WB法检测CHD1L在胶质瘤组织中的表达 | 第24-25页 |
| 3.1.2 免疫组化检测CHD1L在胶质瘤组织中的表达 | 第25页 |
| 3.2 CHD1L的表达与胶质瘤临床病理因素的相关性 | 第25-27页 |
| 3.3 CHD1L的表达与胶质瘤患者预后的关系 | 第27-28页 |
| 3.4 CHD1L在胶质瘤细胞株中的表达 | 第28-29页 |
| 3.5 血清饥饿释放过程中胶质瘤细胞周期的变化 | 第29-30页 |
| 3.5.1 血清饥饿释放过程中U87MG和U251MG细胞周期的变化 | 第29-30页 |
| 3.5.2 血清饥饿释放过程中CHD1L的蛋白表达变化 | 第30页 |
| 3.6 CHD1L表达的下调对细胞周期的影响 | 第30-32页 |
| 3.7 CHD1L表达的下调可以诱导胶质瘤细胞的凋亡 | 第32页 |
| 3.8 CHD1L与胶质瘤的侵袭迁移相关 | 第32-34页 |
| 第四章 讨论 | 第34-37页 |
| 4.1 CHD1L在胶质瘤组织中的表达及其临床意义 | 第34-35页 |
| 4.2 CHD1L在胶质瘤细胞中的表达及其功能研究 | 第35-37页 |
| 第五章 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 英文缩写词表 | 第41-43页 |
| 综述 | 第43-55页 |
| 综述参考文献 | 第51-55页 |
| 在攻读硕士学位期间公开发表的论文与参加的项目 | 第55-56页 |
| A:在国内外刊物上发表的论文 | 第55页 |
| B:所参加的项目 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
