缩略词表 | 第6-7页 |
中文摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
前言 | 第10-12页 |
材料与方法 | 第12-20页 |
1. 材料 | 第12-13页 |
1.1 细胞株与菌株 | 第12页 |
1.2 质粒 | 第12页 |
1.3 常用分子生物学试剂 | 第12页 |
1.4 细胞培养试剂 | 第12-13页 |
1.5 主要实验仪器 | 第13页 |
2. 方法 | 第13-20页 |
2.1 细胞培养 | 第13页 |
2.2 重组质粒构建与鉴定 | 第13-14页 |
2.3 真核细胞的转染 | 第14页 |
2.4 免疫共沉淀实验(IP实验) | 第14-15页 |
2.5 实时荧光定量(Real-Time)RT-PCR | 第15页 |
2.6 启动子活性分析实验 | 第15-16页 |
2.7 慢病毒包装 | 第16页 |
2.8 细胞稳定克隆的制备 | 第16页 |
2.9 转染小干扰RNA即siRNA | 第16-17页 |
2.10 染色质免疫共沉淀(CHIP) | 第17页 |
2.11 葡萄糖消耗测定 | 第17-18页 |
2.12 丙酮酸含量测定 | 第18页 |
2.13 乳酸含量测定 | 第18页 |
2.14 细胞生长曲线分析 | 第18页 |
2.15 免疫组织化学 | 第18-19页 |
2.16 免疫组化染色、评分、相关性分析 | 第19页 |
2.17 统计分析 | 第19-20页 |
结果 | 第20-28页 |
1. TF10调控乳腺癌细胞糖代谢的基因筛选 | 第20-22页 |
1.1 TF10基因外源低表达乳腺癌细胞模型的建立 | 第20-21页 |
1.2 基因芯片差异功能聚类分析 | 第21-22页 |
2. TF10促进PFKL、PKM2、LDHA的mRNA水平表达 | 第22-25页 |
2.1 TF10促进PFKL、PKM2、LDHA的启动子活性 | 第22-23页 |
2.2 TF10可募集到PFKL、PKM2、LDHA启动子上 | 第23-24页 |
2.3 TF10调控乳腺癌细胞糖代谢的代谢产物 | 第24-25页 |
3. TF10促进乳腺癌细胞的增殖 | 第25-27页 |
3.1 TF10可通过促进糖代谢过程来促进乳腺癌细胞增殖 | 第25-26页 |
3.2 TF10促进乳腺癌细胞的增殖依赖于LDHA的表达 | 第26-27页 |
4. TF10在乳腺癌组织中的表达情况 | 第27-28页 |
4.1 TF10在乳腺癌组织中较癌旁组织高表达 | 第27页 |
4.2 TF10与PKM2、LDHA在乳腺癌组织中呈正相关 | 第27-28页 |
讨论 | 第28-30页 |
结论 | 第30-31页 |
参考文献 | 第31-35页 |
文献综述 | 第35-44页 |
参考文献 | 第40-44页 |
发表文章 | 第44-45页 |
致谢 | 第45页 |