饲料固氮菌与三种来源纤维素分解菌混合对体外发酵影响
| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第12-22页 |
| 1.1 瘤胃内环境及其微生物研究进展 | 第12-15页 |
| 1.1.1 瘤胃内环境 | 第12页 |
| 1.1.2 瘤胃微生物 | 第12-14页 |
| 1.1.3 瘤胃内各微生物间的相互作用 | 第14-15页 |
| 1.2 三大营养物质在瘤胃内的发酵 | 第15-16页 |
| 1.2.1 碳水化合物发酵 | 第15-16页 |
| 1.2.2 蛋白质的降解 | 第16页 |
| 1.2.3 脂肪的降解 | 第16页 |
| 1.3 纤维素的降解特点 | 第16-17页 |
| 1.4 体外发酵技术 | 第17页 |
| 1.5 纤维素分解菌和固氮菌 | 第17-19页 |
| 1.5.1 相关领域纤维素分解菌 | 第18页 |
| 1.5.2 相关领域固氮菌 | 第18-19页 |
| 1.6 混合菌对反刍动物的作用 | 第19-20页 |
| 1.6.1 作为混合菌的条件 | 第19-20页 |
| 1.6.2 混合菌的作用 | 第20页 |
| 1.7 微生物的实时荧光定量PCR | 第20-21页 |
| 1.8 研究的总思路和目的 | 第21-22页 |
| 1.8.1 立题依据 | 第21页 |
| 1.8.2 研究目的 | 第21-22页 |
| 2 实验材料与方法 | 第22-33页 |
| 2.1 固氮菌和纤维素分解菌的复活培养(试验一) | 第22-23页 |
| 2.1.1 主要试验材料和试剂 | 第22页 |
| 2.1.2 培养基 | 第22页 |
| 2.1.3 试验活菌制剂 | 第22页 |
| 2.1.4 试验仪器和设备 | 第22-23页 |
| 2.1.5 菌的活化与计数 | 第23页 |
| 2.2 体外发酵试验(试验二) | 第23-25页 |
| 2.2.1 菌株组合 | 第23页 |
| 2.2.2 主要试验材料和试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.3 培养液的配制 | 第24页 |
| 2.2.4 试验设计 | 第24-25页 |
| 2.2.5 体外培养装置及操作 | 第25页 |
| 2.3 指标及测定 | 第25-32页 |
| 2.3.1 产气量的测定 | 第25页 |
| 2.3.2 瘤胃液pH值的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.3 瘤胃液NH_3-N浓度的测定 | 第26页 |
| 2.3.4 VFA的测定 | 第26-28页 |
| 2.3.5 菌体蛋白(MCP)的测定 | 第28-29页 |
| 2.3.6 沉淀中DM的测定及降解率的计算 | 第29页 |
| 2.3.7 纤维素分解酶的测定 | 第29-30页 |
| 2.3.8 荧光定量PCR测定 | 第30-32页 |
| 2.4 统计分析 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-39页 |
| 3.1 复活的固氮菌和纤维素分解菌 | 第33页 |
| 3.1.1 菌的活化 | 第33页 |
| 3.1.2 菌的计数 | 第33页 |
| 3.2 体外发酵 | 第33-39页 |
| 3.2.1 产气量 | 第33页 |
| 3.2.2 对酶活力和DMD的影响 | 第33-34页 |
| 3.2.3 对发酵指标的影响 | 第34-38页 |
| 3.2.4 实时荧光定量PCR | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-45页 |
| 4.1 固氮菌和纤维素分解菌的复活培养 | 第39页 |
| 4.2 混合菌对培养液pH的影响 | 第39-40页 |
| 4.3 混合菌对产气量和DMD的影响 | 第40-41页 |
| 4.4 混合菌对VFA的影响 | 第41-42页 |
| 4.5 混合菌对酶活力的影响 | 第42页 |
| 4.6 混合菌对NH3-N和MCP的影响 | 第42-43页 |
| 4.7 三种菌数量变化 | 第43-44页 |
| 4.8 关于对照 | 第44-45页 |
| 5 结论 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第55页 |
