| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第11-29页 |
| 第一节 背景介绍 | 第11-14页 |
| 1.1.1 超分子自组装的概念 | 第11页 |
| 1.1.2 超分子水凝胶的发展前景 | 第11-12页 |
| 1.1.3 超分子水凝胶结构和形成过程 | 第12-14页 |
| 第二节 形成的水凝胶的方法 | 第14-20页 |
| 1.2.1 共价键的形成 | 第14-16页 |
| 1.2.2 金属离子/盐和pH的改变 | 第16-17页 |
| 1.2.3 光致辐照 | 第17-18页 |
| 1.2.4 催化和酶反应 | 第18-20页 |
| 第三节 超分子自组装多肽水凝胶的应用 | 第20-25页 |
| 1.3.1 组织工程 | 第20-21页 |
| 1.3.2 药物传输 | 第21-23页 |
| 1.3.3 纳米加工模板 | 第23-25页 |
| 第四节 本论文的选题依据和课题的提出 | 第25-29页 |
| 1.4.1 本论文的选题依据 | 第25-26页 |
| 1.4.2 课题的提出 | 第26-29页 |
| 第二章 实验部分 | 第29-48页 |
| 第一节 实验原理 | 第29-33页 |
| 2.1.1 肽键的形成基本原理 | 第29-30页 |
| 2.1.2 多肽合成涉及的反应机理 | 第30-33页 |
| 第二节 实验所需试剂及仪器 | 第33-35页 |
| 2.2.1 实验所用试剂 | 第33-34页 |
| 2.2.2 主要实验所用仪器 | 第34-35页 |
| 第三节 实验的设计和研究方法 | 第35-48页 |
| 2.3.1 多肽的化学结构式 | 第35页 |
| 2.3.2 中间产物Fmoc-Tyr(H_2PO_3)-OH的合成 | 第35-37页 |
| 2.3.3 中间产物NBD-β-Ala（化合物 3）的合成 | 第37页 |
| 2.3.4 目标多肽NBD-FFpY的固相合成 | 第37-39页 |
| 2.3.5 多肽小分子的纯化 | 第39-41页 |
| 2.3.6 制备NBD-FFpY小分子水凝胶 | 第41页 |
| 2.3.7 流变仪测试 | 第41-42页 |
| 2.3.8 透射电子显微镜（TEM）观察水凝胶的微观形貌 | 第42页 |
| 2.3.9 扫描电子显微镜（SEM）观察对成胶后的微观形貌 | 第42页 |
| 2.3.10 临界胶束浓度（CMC） | 第42-43页 |
| 2.3.11 酶切前后化合物的转化 | 第43页 |
| 2.3.12 酶标仪测定荧光光谱 | 第43-45页 |
| 2.3.13 圆二色谱（CD） | 第45-46页 |
| 2.3.14 细胞培养 | 第46页 |
| 2.3.15 细胞传代培养 | 第46页 |
| 2.3.16 细胞超声破碎 | 第46-47页 |
| 2.3.17 液质联用、高分辨质谱与核磁测试 | 第47页 |
| 2.3.18 玻璃片表面修饰 3-氨丙基三乙氧基硅烷（APTES） | 第47-48页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第48-64页 |
| 第一节 化合物结构的表征结果 | 第48-59页 |
| 3.1.1 核磁与质谱信息 | 第48-50页 |
| 3.1.2 LC-MS分析NBD-FFpY多肽在碱性磷酸酶下的转化 | 第50-51页 |
| 3.1.3 酶催化动力学结果 | 第51-53页 |
| 3.1.4 多肽的成胶测试 | 第53页 |
| 3.1.5 多肽NBD-FFpY在PBS溶液自组装性能 | 第53-54页 |
| 3.1.6 酶切前后的纳米形貌 | 第54-55页 |
| 3.1.7 多肽在玻璃表面自组装扫描电子显微镜的结果 | 第55-56页 |
| 3.1.8 多肽自组装行为研究 | 第56-57页 |
| 3.1.9 小分子水凝胶力学性能的测定结果 | 第57-59页 |
| 第二节 荧光激发光谱与肉眼检测酶活性 | 第59-64页 |
| 3.2.1 PBS溶液中检测酶的活性 | 第59-61页 |
| 3.2.2 复杂环境下检测酶的活性 | 第61-64页 |
| 第四章 结论及展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简历、在学期间发表的学位论文与研究成果 | 第73页 |
