| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-20页 |
| 1 细胞多肽组学 | 第8-17页 |
| 1.1 细胞凋亡及其研究概况 | 第8-9页 |
| 1.2 H_2O_2诱导细胞凋亡机制的生物学研究 | 第9-11页 |
| 1.3 基于蛋白质学的细胞凋亡研究 | 第11-14页 |
| 1.4 基于多肽组学的细胞凋亡研究 | 第14-17页 |
| 1.4.1 多肽及多肽功能 | 第14页 |
| 1.4.2 多肽组学简介 | 第14-15页 |
| 1.4.3 使用多肽组学发现生物活性肽 | 第15-16页 |
| 1.4.4 定量多肽组学 | 第16-17页 |
| 2 基于多肽组学的植物多肽研究 | 第17-19页 |
| 3 本研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 多肽组学方法研究H_2O_2致Hela细胞凋亡 | 第20-43页 |
| 1 引言 | 第20页 |
| 2 材料和方法 | 第20-24页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 细胞复苏 | 第21页 |
| 2.2.2 细胞传代 | 第21页 |
| 2.2.3 细胞存活率的测定 | 第21-22页 |
| 2.2.4 流式细胞仪检测细胞凋亡率 | 第22-23页 |
| 2.2.5 多肽提取 | 第23-24页 |
| 2.2.6 nanoLC-MS/MS分析 | 第24页 |
| 2.3 数据分析 | 第24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-39页 |
| 3.1 H_2O_2致Hela细胞的细胞毒性作用 | 第24-27页 |
| 3.2 定量多肽组学方法研究Hela细胞凋亡 | 第27-39页 |
| 4 讨论 | 第39-43页 |
| 4.1 Hela细胞模型 | 第39页 |
| 4.2 H_2O_2的细胞毒性作用 | 第39-40页 |
| 4.3 H_2O_2诱导细胞凋亡 | 第40-41页 |
| 4.4 多肽组学技术研究凋亡产生的多肽 | 第41-43页 |
| 第三章 基于nanoLC-MS/MS的水稻多肽组学研究 | 第43-51页 |
| 1 引言 | 第43页 |
| 2 材料与方法 | 第43-44页 |
| 2.1 材料 | 第43页 |
| 2.2 试剂 | 第43页 |
| 2.3 多肽的提取方法和质谱分析 | 第43-44页 |
| 2.3.1 叶片和根部多肽样品的制备 | 第43-44页 |
| 2.3.2 nanoLC-MS/MS分析 | 第44页 |
| 2.4 数据库的搜素及蛋白质的识别和验证 | 第44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-48页 |
| 3.1 水稻株高和株重 | 第44-45页 |
| 3.2 多肽样品的提取效果 | 第45-47页 |
| 3.3 多肽定位分析结果 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64页 |