| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1 水通道蛋白的研究进展 | 第10-14页 |
| 1.1 水通道蛋白的结构 | 第10-11页 |
| 1.2 水通道蛋白的分类 | 第11-13页 |
| 1.3 水通道蛋白的功能 | 第13-14页 |
| 2 昆虫水通道蛋白的研究现状 | 第14-20页 |
| 2.1 昆虫水通道蛋白的组织分布 | 第14-15页 |
| 2.2 昆虫水通道蛋白的分类 | 第15-17页 |
| 2.3 昆虫水通道蛋白的功能 | 第17-20页 |
| 3 本文的总体研究思路及主要内容 | 第20-21页 |
| 第二章 水稻二化螟水通道蛋白aquaporin 12-like (CsAQP12L)基因的克隆 | 第21-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 供试虫源 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法与步骤 | 第22-26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-32页 |
| 2.3.1 二化螟CsAQP12L序列特征分析 | 第26-29页 |
| 2.3.2 系统发育分析 | 第29-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-33页 |
| 第三章 不同处理下水稻二化螟CsAQP12L基因表达 | 第33-42页 |
| 3.1 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 供试虫源 | 第33页 |
| 3.1.2 主要试剂和仪器 | 第33-34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 二化螟5龄幼虫不同组织样品准备 | 第34页 |
| 3.2.2 不同发育阶段二化螟样品准备 | 第34页 |
| 3.2.3 二化螟不同湿度处理样品准备 | 第34页 |
| 3.2.4 二化螟5龄幼虫不同温度处理样品准备 | 第34-35页 |
| 3.2.5 不同处理的二化螟RNA的提取及第一链cDNA的合成 | 第35页 |
| 3.2.6 引物的设计与合成 | 第35-36页 |
| 3.2.7 实时定量分析 | 第36-37页 |
| 3.2.8 数据处理 | 第37页 |
| 3.3 结果 | 第37-40页 |
| 3.3.1 二化螟5龄幼虫不同组织的CsAQP12L表达分析 | 第37-38页 |
| 3.3.2 二化螟不同发育时期CsAQP12L的表达分析 | 第38页 |
| 3.3.3 二化螟不同湿度和温度处理下CsAQP12L的表达分析 | 第38-40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-42页 |
| 第四章 二化螟三条水通道蛋白的功能研究 | 第42-49页 |
| 4.1 实验材料 | 第42页 |
| 4.1.1 供试虫源 | 第42页 |
| 4.1.2 主要试剂和仪器 | 第42页 |
| 4.2 实验方法 | 第42-45页 |
| 4.2.1 总RNA的提取及第一链cDNA模板的合成 | 第42-43页 |
| 4.2.2 四种水通道蛋白基因表达载体的构建 | 第43页 |
| 4.2.3 cRNA的合成 | 第43-44页 |
| 4.2.4 四种水通道蛋白基因的真核表达分析 | 第44页 |
| 4.2.5 数据处理 | 第44-45页 |
| 4.3 结果与分析 | 第45-48页 |
| 4.3.1 CsAQP1、CsAQP3、CsAQP12L1和CsAQP12L2对水的渗透速率的分析 | 第45-47页 |
| 4.3.2 CsAQP1、CsAQP3、CsAQP12L1和CsAQP12L2对不同溶质的渗透能力 | 第47-48页 |
| 4.4 讨论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-59页 |
| 附录 | 第59-61页 |
| 附录Ⅰ | 第59-60页 |
| 附录Ⅱ | 第60-61页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
