| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-13页 |
| 第2章 观察TMEM106B基因对脑膜瘤IOMM-Lee和CH157细胞株增殖和血管生成的影响 | 第13-45页 |
| 2.1 材料与方法 | 第13-34页 |
| 2.1.1 恶性脑膜瘤细胞培养 | 第13-15页 |
| 2.1.2 沉默TMEM106B基因质粒构建 | 第15-19页 |
| 2.1.3 慢病毒包装 | 第19-21页 |
| 2.1.4 慢病毒感染 | 第21-22页 |
| 2.1.5 q-PCR检测各组脑膜瘤细胞TMEM106B mRNA的表达情况 | 第22-25页 |
| 2.1.6 Western blot检测各组脑膜瘤细胞TMEM106B蛋白表达情况 | 第25-29页 |
| 2.1.7 MTT、EdU和细胞周期检测各组细胞增殖和周期 | 第29-31页 |
| 2.1.8 小管形成实验检测细胞血管生成 | 第31-32页 |
| 2.1.9 q-PCR检测各组脑膜瘤细胞Her2、JUN和VEGF mRNA的表达情况 | 第32页 |
| 2.1.10 Western blot检测各组脑膜瘤细胞Her2、JUN和VEGF蛋白表达情况 | 第32-33页 |
| 2.1.11 Her2抑制剂Afatinib（BIBW2992）处理恶性脑膜瘤细胞检测Her2，TMEN106B，JUN基因表达情况 | 第33页 |
| 2.1.12q-PCR检测Her2抑制剂Afatinib（BIBW2992）处理后脑膜瘤细胞Her2、JUN和VEGF mRNA的表达情况 | 第33-34页 |
| 2.1.13 Western blot检测Her2抑制剂Afatinib（BIBW2992）处理后脑膜瘤细胞Her2、JUN和VEGF蛋白表达情况 | 第34页 |
| 2.1.14 统计学处理与分析 | 第34页 |
| 2.2 结果 | 第34-45页 |
| 2.2.1 沉默TMEM106B基因质粒测序 | 第34-36页 |
| 2.2.2 慢病毒转染恶性脑膜瘤细胞的MOI值 | 第36-37页 |
| 2.2.3 q-PCR检测各组细胞mRNA TMEM106B的表达情况 | 第37-38页 |
| 2.2.4 Western blot检测各组细胞TMEM106B蛋白的表达情况 | 第38-39页 |
| 2.2.5 MTT检测各组细胞生长曲线 | 第39-40页 |
| 2.2.6 EdU标记法检测细胞DNA增殖情况 | 第40-41页 |
| 2.2.7 流式细胞术检测细胞周期 | 第41页 |
| 2.2.8 小管形成检测细胞的血管生成情况 | 第41-42页 |
| 2.2.9 q-PCR检测各组细胞TMEM106B，Her2，JUN和VEGF mRNA表达情况 | 第42页 |
| 2.2.10 Western blot检测各组细胞TMEM106B，Her2，JUN和VEGF蛋白的表达情况 | 第42-43页 |
| 2.2.11 q-PCR检测Her2抑制剂Afatinib（BIBW2992）处理后恶性脑膜瘤细胞Her2，TMEN106B，JUN m RNA的表达情况 | 第43-44页 |
| 2.2.12 Western blot检测Her2抑制剂Afatinib（BIBW2992）处理后恶性脑膜瘤细胞Her2，TMEN106B，JUN m RNA的表达情况 | 第44-45页 |
| 第3章 讨论 | 第45-51页 |
| 3.1 恶性脑膜瘤治疗的研究现状 | 第45页 |
| 3.2 TMEM106B基因的研究现状 | 第45-46页 |
| 3.3 Her2在脑膜瘤中研究现状 | 第46-47页 |
| 3.4 沉默TMEM106B基因恶性脑膜瘤稳定细胞株模型的建立 | 第47页 |
| 3.5 TMEM106B基因对恶性脑膜瘤增殖的影响 | 第47-48页 |
| 3.6 TMEM106B基因对恶性脑膜瘤血管生成的影响 | 第48-49页 |
| 3.7 TMEM106B在恶性脑膜瘤中发挥作用的可能机制 | 第49页 |
| 3.8 存在的问题与展望 | 第49-51页 |
| 第4章 结论 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第57-58页 |
| 综述 | 第58-66页 |
| 参考文献 | 第64-66页 |
