| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第10-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-15页 |
| 第2章 材料及方法 | 第15-33页 |
| 2.1 主要材料及试剂 | 第15-18页 |
| 2.1.1 实验细胞与动物 | 第15页 |
| 2.1.2 主要试剂与产地 | 第15-17页 |
| 2.1.3 主要仪器设备与产地 | 第17-18页 |
| 2.2 试验方法 | 第18-33页 |
| 2.2.1 细胞培养用品及各种液体的配制 | 第18-20页 |
| 2.2.2 质粒提取 | 第20-21页 |
| 2.2.3 原代骨髓间充质干细胞的培养 | 第21-23页 |
| 2.2.4 质粒转染 | 第23页 |
| 2.2.5 BMSCs骨形成能力的检测 | 第23-25页 |
| 2.2.6 荧光定量PCR检测mRNA表达 | 第25-27页 |
| 2.2.7 Western blot检测蛋白表达 | 第27-29页 |
| 2.2.8 小鼠尾静脉注射MGP腺病毒载体 | 第29-30页 |
| 2.2.9 腰椎免疫组化 | 第30-32页 |
| 2.2.10 腰椎Micro-CT检测 | 第32页 |
| 2.2.11 数据处理 | 第32-33页 |
| 第3章 结果 | 第33-50页 |
| 3.1 MGP对BMSCs成骨分化能力的影响 | 第33-45页 |
| 3.1.1 原代BMSCs的细胞形态学观察 | 第33-34页 |
| 3.1.2 流式细胞术检测原代BMSCs细胞表面标志 | 第34-35页 |
| 3.1.3 MGP基因重组质粒转染BMSCs后MGP基因及蛋白的表达 | 第35-38页 |
| 3.1.4 MGP基因重组质粒转染对BMSCs骨形成能力的影响 | 第38-45页 |
| 3.2 MGP腺病毒载体尾静脉注射后在小鼠体内的表达 | 第45-50页 |
| 3.2.1 腰椎MGP mRNA表达量的情况 | 第45页 |
| 3.2.2 腰椎MGP蛋白表达量的情况 | 第45-48页 |
| 3.2.3 腰椎Micro-CT检测 | 第48-50页 |
| 第4章 讨论 | 第50-54页 |
| 第5章 结论与展望 | 第54-55页 |
| 5.1 结论 | 第54页 |
| 5.2 进一步的工作方向 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第61-62页 |
| 综述 | 第62-69页 |
| 参考文献 | 第66-69页 |
