| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-25页 |
| 1.1 脱水蛋白的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.1.1 脱水蛋白的定义与结构 | 第14-15页 |
| 1.1.2 脱水蛋白的分类 | 第15-16页 |
| 1.1.3 脱水蛋白保守元件的功能 | 第16页 |
| 1.2 脱水蛋白的定位 | 第16-18页 |
| 1.2.1 脱水蛋白组织水平的定位 | 第17页 |
| 1.2.2 脱水蛋白亚细胞水平的定位 | 第17-18页 |
| 1.3 温度胁迫相关的脱水蛋白 | 第18-22页 |
| 1.3.1 低温胁迫相关的脱水蛋白 | 第18-20页 |
| 1.3.2 低温胁迫下脱水蛋白的作用机制 | 第20-22页 |
| 1.3.3 高温胁迫相关的脱水蛋白 | 第22页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第22-25页 |
| 第二章 不同胁迫下小麦脱水蛋白WZY2及其重组蛋白对大肠杆菌活力的影响 | 第25-47页 |
| 2.1 材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 载体与菌种 | 第25页 |
| 2.1.2 主要试剂与设备 | 第25-26页 |
| 2.2 方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 构建脱水蛋白WZY2及其重组蛋白的表达载体 | 第26-28页 |
| 2.2.2 WZY2及其重组蛋白的生物信息学分析 | 第28页 |
| 2.2.3 原核细胞表达条件筛选 | 第28-29页 |
| 2.2.4 对表达WZY2及其重组蛋白的大肠杆菌的多种胁迫 | 第29页 |
| 2.2.5 数据统计分析 | 第29页 |
| 2.3 结果 | 第29-44页 |
| 2.3.1 WZY2及其重组蛋白表达载体构建与表达条件确定 | 第29-31页 |
| 2.3.2 WZY2及其重组蛋白的生物信息学分析 | 第31-35页 |
| 2.3.3 温度胁迫下WZY2及其重组蛋白对大肠杆菌活力的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.4 过氧化胁迫下WZY2及其重组蛋白对大肠杆菌活力的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.5 金属离子胁迫下WZY2及其重组蛋白对大肠杆菌活力的影响 | 第37-44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-47页 |
| 第三章 温度胁迫下小麦脱水蛋白WZY2及其重组蛋白对乳酸脱氢酶的保护作用 | 第47-55页 |
| 3.1 材料 | 第47页 |
| 3.1.1 载体与菌种 | 第47页 |
| 3.1.2 主要试剂与设备 | 第47页 |
| 3.2 方法 | 第47-48页 |
| 3.2.1 WZY2及其重组蛋白的提取和纯化 | 第47-48页 |
| 3.2.2 WZY2及其重组蛋白对LDH的保护功能分析 | 第48页 |
| 3.2.3 数据统计分析 | 第48页 |
| 3.3 结果 | 第48-51页 |
| 3.3.1 WZY2及其重组蛋白的提取和纯化 | 第48-49页 |
| 3.3.2 低温胁迫下WZY2及其重组蛋白对LDH保护的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.3 高温胁迫下WZY2及其重组蛋白对LDH保护的影响 | 第50-51页 |
| 3.4 讨论 | 第51-55页 |
| 第四章 低温胁迫下小麦脱水蛋白WZY2及其重组蛋白在细胞内的分布和动态变化 | 第55-65页 |
| 4.1 材料 | 第55-56页 |
| 4.1.1 载体与菌种 | 第55页 |
| 4.1.2 植物材料 | 第55页 |
| 4.1.3 主要试剂与设备 | 第55-56页 |
| 4.2 方法 | 第56-57页 |
| 4.2.1 构建脱水蛋白WZY2及其重组蛋白的亚细胞定位载体 | 第56页 |
| 4.2.2 培育小麦幼苗 | 第56页 |
| 4.2.3 基因枪法转化小麦叶表皮细胞 | 第56-57页 |
| 4.2.4 低温胁迫下观察脱水蛋白WZY2及其重组蛋白的定位和动态变化 | 第57页 |
| 4.3 结果 | 第57-61页 |
| 4.3.1 脱水蛋白WZY2及其重组蛋白亚细胞定位载体构建 | 第57-58页 |
| 4.3.2 脱水蛋白WZY2的亚细胞定位 | 第58-59页 |
| 4.3.3 WZY2在冬小麦和春小麦叶表皮细胞内不同的动态变化 | 第59-60页 |
| 4.3.4 WZY2重组蛋白在冬小麦和春小麦叶表皮细胞内不同的动态变化 | 第60-61页 |
| 4.4 讨论 | 第61-65页 |
| 第五章 低温胁迫下小麦脱水蛋白WZY2在不同类型小麦中的表达特征 | 第65-77页 |
| 5.1 材料 | 第65页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第65页 |
| 5.1.2 主要试剂与设备 | 第65页 |
| 5.2 方法 | 第65-67页 |
| 5.2.1 培养小麦幼苗 | 第65-66页 |
| 5.2.2 低温复温处理小麦幼苗 | 第66页 |
| 5.2.3 提取RNA | 第66页 |
| 5.2.4 反转录合成cDNA | 第66页 |
| 5.2.5 实时荧光定量PCR | 第66-67页 |
| 5.2.6 植物总蛋白提取 | 第67页 |
| 5.2.7 West blot分析 | 第67页 |
| 5.2.8 数据统计分析 | 第67页 |
| 5.3 结果 | 第67-73页 |
| 5.3.1 小麦地上部和地下部的RNA提取与cDNA反转录 | 第67-68页 |
| 5.3.2 小麦地上部和地下部的总蛋白提取与Weatern blot分析 | 第68页 |
| 5.3.3 低温和复温处理下WZY2和WZY2在冬小麦不同组织中的相对表达量 | 第68-71页 |
| 5.3.4 低温和复温处理下WZY2和WZY2在春小麦不同组织中的相对表达量 | 第71-73页 |
| 5.4 讨论 | 第73-77页 |
| 第六章 小麦脱水蛋白WZY2与DHN14和WCOR80的对比 | 第77-85页 |
| 6.1 材料 | 第77页 |
| 6.1.1 载体与菌种 | 第77页 |
| 6.1.2 主要试剂与设备 | 第77页 |
| 6.2 方法 | 第77-78页 |
| 6.2.1 构建脱水蛋白DHN14和WCOR80的表达载体 | 第77-78页 |
| 6.2.2 脱水蛋白DHN14和WCOR80的生物信息学分析 | 第78页 |
| 6.3 结果 | 第78-82页 |
| 6.3.1 脱水蛋白DHN14和WCOR80表达载体构建 | 第78-79页 |
| 6.3.2 脱水蛋白WZY2与DHN14的对比 | 第79-81页 |
| 6.3.3 脱水蛋白WZY2与WCOR80的对比 | 第81-82页 |
| 6.4 讨论 | 第82-85页 |
| 第七章 结论 | 第85-89页 |
| 参考文献 | 第89-99页 |
| 缩略词表 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101-103页 |
| 作者简介 | 第103页 |
