| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| ·纳米技术概述 | 第12-13页 |
| ·纳米技术与纳米材料 | 第12页 |
| ·肿瘤纳米技术 | 第12-13页 |
| ·硒的生物活性 | 第13-16页 |
| ·抗氧化活性 | 第13-15页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第15-16页 |
| ·增强化疗效果、降低化疗药物耐药性活性 | 第16页 |
| ·碲的生物活性 | 第16-20页 |
| ·抗氧化活性 | 第17-18页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第18-19页 |
| ·抗菌活性 | 第19-20页 |
| ·纳米硒/碲的研究进展 | 第20-23页 |
| ·纳米硒的研究进展 | 第20-22页 |
| ·纳米碲的研究进展 | 第22-23页 |
| ·糖类物质在纳米材料合成中的应用 | 第23-26页 |
| ·糖金属纳米粒子 | 第23-24页 |
| ·糖类物质在肿瘤靶向药物载体中的应用 | 第24-26页 |
| ·选题依据及意义 | 第26-27页 |
| ·主要创新点 | 第27-28页 |
| 第二章 虎奶菇菌核多糖-蛋白质复合物功能化纳米硒的制备及其抗肿瘤活性研究 | 第28-53页 |
| ·实验试剂、仪器与方法 | 第28-36页 |
| ·实验试剂 | 第28-29页 |
| ·实验仪器 | 第29-30页 |
| ·PTR-SeNPs 的制备及表征 | 第30-31页 |
| ·ABTS·+自由基清除能力的测定 | 第31页 |
| ·细胞系及培养 | 第31页 |
| ·细胞存活率的检测 | 第31-32页 |
| ·细胞吸收 PTR-SeNPs 的效率测定 | 第32页 |
| ·PTR-SeNPs 胞内定位的检测 | 第32页 |
| ·肿瘤细胞凋亡的检测 | 第32-33页 |
| ·TUNEL 和 DAPI 双染 | 第33页 |
| ·Annexin-V 染色法 | 第33页 |
| ·胞内 PARP 切割的检测 | 第33-34页 |
| ·Caspase 活性的检测 | 第34-35页 |
| ·线粒体跨膜电位(ΔΨm)的检测 | 第35页 |
| ·荧光法检测细胞内活性氧(ROS) | 第35页 |
| ·统计分析 | 第35-36页 |
| ·结果与讨论 | 第36-52页 |
| ·PTR-SeNPs 的制备与表征 | 第36-41页 |
| ·PTR-SeNPs 体外抗氧化活性 | 第41页 |
| ·PTR-SeNPs 体外抗肿瘤活性 | 第41-43页 |
| ·MCF-7 细胞对 PTR-SeNPs 的吸收效率及其在胞内定位 | 第43-46页 |
| ·PTR-SeNPs 诱导 MCF-7 细胞凋亡 | 第46-48页 |
| ·PTR-SeNPs 诱导 MCF-7 细胞 PARP 切割 | 第48-50页 |
| ·PTR-SeNPs 通过生产过量 ROS 诱导线粒体功能失调 | 第50-52页 |
| ·本章小结 | 第52-53页 |
| 第三章 虎乳灵芝菌核多糖-蛋白质复合物功能化纳米硒的制备及其抗肿瘤活性研究 | 第53-68页 |
| ·实验试剂、仪器与方法 | 第53-55页 |
| ·实验试剂 | 第53-54页 |
| ·实验仪器 | 第54页 |
| ·PRW-SeNPs 的制备及表征 | 第54页 |
| ·ABTS·+自由基清除能力的测定 | 第54页 |
| ·细胞系及培养 | 第54页 |
| ·细胞存活率的检测 | 第54页 |
| ·细胞吸收 PRW-SeNPs 的效率测定 | 第54页 |
| ·肿瘤细胞凋亡的检测 | 第54-55页 |
| ·TUNEL 和 DAPI 双染 | 第55页 |
| ·Caspase 活性的检测 | 第55页 |
| ·统计分析 | 第55页 |
| ·结果与讨论 | 第55-66页 |
| ·PRW-SeNPs 的制备与表征 | 第55-60页 |
| ·PRW-SeNPs 体外抗氧化活性 | 第60-61页 |
| ·PRW-SeNPs 体外抗肿瘤活性 | 第61-63页 |
| ·A549 细胞对 PRW-SeNPs 的吸收效率 | 第63-64页 |
| ·PRW-SeNPs 诱导 A549 细胞凋亡和细胞周期阻滞 | 第64-66页 |
| ·PRW-SeNPs 诱导 A549 细胞 caspase 活化 | 第66页 |
| ·本章小结 | 第66-68页 |
| 第四章 葡萄糖功能化纳米硒的制备及其抗肿瘤活性研究 | 第68-83页 |
| ·实验试剂、仪器与方法 | 第69-71页 |
| ·实验试剂 | 第69页 |
| ·实验仪器 | 第69-70页 |
| ·Glu-SeNPs 的制备及表征 | 第70页 |
| ·细胞系及培养 | 第70页 |
| ·细胞存活率的检测 | 第70页 |
| ·细胞内硒含量的测定 | 第70页 |
| ·肿瘤细胞凋亡的检测 | 第70-71页 |
| ·TUNEL 和 DAPI 双染 | 第71页 |
| ·Caspase 活性的检测 | 第71页 |
| ·线粒体跨膜电位(ΔΨm)的检测 | 第71页 |
| ·统计分析 | 第71页 |
| ·结果与结论 | 第71-82页 |
| ·Glu-SeNPs 的制备与表征 | 第71-76页 |
| ·Glu-SeNPs 体外抗肿瘤活性 | 第76-78页 |
| ·HepG2 细胞对 Glu-SeNPs 的吸收效率 | 第78-79页 |
| ·Glu-SeNPs 诱导 HepG2 细胞凋亡和细胞周期阻滞 | 第79-81页 |
| ·Glu-SeNPs 诱导 HepG2 细胞 caspase 活化 | 第81页 |
| ·Glu-SeNPs 诱导线粒体跨膜电位降低 | 第81-82页 |
| ·本章小结 | 第82-83页 |
| 第五章 虎奶菇菌核多糖-蛋白质复合物功能化纳米碲的制备及其抗肿瘤活性研究 | 第83-102页 |
| ·实验试剂、仪器与方法 | 第84-87页 |
| ·实验试剂 | 第84页 |
| ·实验仪器 | 第84页 |
| ·PTR-TeNPs 的制备及表征 | 第84页 |
| ·自由基清除能力的测定 | 第84-85页 |
| ·细胞系及培养 | 第85页 |
| ·细胞存活率的检测 | 第85页 |
| ·细胞胞内碲含量的测定 | 第85页 |
| ·肿瘤细胞凋亡的检测 | 第85页 |
| ·TUNEL 和 DAPI 双染 | 第85页 |
| ·Caspase 活性的检测 | 第85-86页 |
| ·线粒体跨膜电位(ΔΨm)的检测 | 第86页 |
| ·细胞超微结构的观察 | 第86-87页 |
| ·统计分析 | 第87页 |
| ·结果与讨论 | 第87-101页 |
| ·PTR-TeNPs 的制备及表征 | 第87-91页 |
| ·PTR-TeNPs 体外抗氧化活性 | 第91-93页 |
| ·PTR-TeNPs 体外抗肿瘤活性 | 第93-95页 |
| ·MCF-7 细胞对 PTR-TeNPs 的吸收效率 | 第95-96页 |
| ·PTR-TeNPs 诱导 MCF-7 细胞凋亡 | 第96-98页 |
| ·PTR-TeNPs 诱导 MCF-7 细胞 caspase 活化 | 第98-99页 |
| ·PTR-TeNPs 诱导线粒体跨膜电位降低 | 第99-100页 |
| ·PTR-TeNPs 诱导肿瘤细胞超微结构变化 | 第100-101页 |
| ·本章小结 | 第101-102页 |
| 第六章 蔗糖还原调控纳米碲及其抗氧化与细胞活性初探 | 第102-115页 |
| ·实验试剂、仪器与方法 | 第102-104页 |
| ·实验试剂 | 第102-103页 |
| ·实验仪器 | 第103页 |
| ·Su-TeNPs 的制备及表征 | 第103页 |
| ·自由基清除能力的测定 | 第103页 |
| ·细胞系及培养 | 第103页 |
| ·细胞存活率的检测 | 第103页 |
| ·Su-TeNPs 拮抗顺铂引起的 HK-2 细胞毒性实验 | 第103-104页 |
| ·统计分析 | 第104页 |
| ·结果与讨论 | 第104-113页 |
| ·Su-TeNPs 的制备与表征 | 第104-108页 |
| ·Su-TeNPs 体外抗氧化活性 | 第108-110页 |
| ·Su-TeNPs 体外抗肿瘤活性 | 第110-111页 |
| ·Su-TeNPs 拮抗顺铂肾毒性 | 第111-113页 |
| ·本章小结 | 第113-115页 |
| 第七章 结论与展望 | 第115-118页 |
| 参考文献 | 第118-134页 |
| 攻读博士期间发表科研论文情况 | 第134-135页 |
| 致谢 | 第135页 |
