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磁性琼脂糖微球固定化猪肺血管紧张素转化酶分离长蛇鲻降血压肽的研究

摘要第4-8页
ABSTRACT第8-12页
符号说明第17-19页
第一章 绪论第19-33页
    1.1 引言第19页
    1.2 血管紧张素转化酶的研究进展第19-22页
        1.2.1 血管紧张素转化酶第19-20页
        1.2.2 ACE对人体血压的调节第20-21页
        1.2.3 ACE的分离纯化第21-22页
    1.3 ACE抑制剂第22-23页
    1.4 ACE抑制肽研究进展第23-28页
        1.4.1 ACE抑制肽的构效关系第24-25页
        1.4.2 ACE抑制肽的制备第25页
        1.4.3 ACE抑制肽的分离纯化第25-28页
    1.5 磁性高分子微球第28-31页
        1.5.1 磁性高分子微球的结构第28-29页
        1.5.2 磁性高分子微球的制备方法第29-30页
        1.5.3 磁性高分子微球在生物分离中的应用第30-31页
    1.6 选题依据及研究内容第31-33页
        1.6.1 课题研究背景及意义第31-32页
        1.6.2 主要研究内容第32-33页
第二章 磁性琼脂糖微球的制备及表征第33-46页
    2.1 前言第33页
    2.2 试剂及仪器第33-35页
        2.2.1 材料试剂第33-34页
        2.2.2 仪器设备第34-35页
    2.3 实验方法第35-36页
        2.3.1 Fe3O4纳米粒子的制备第35页
        2.3.2 磁性琼脂糖微球的制备第35页
        2.3.3 样品的表征与测试第35-36页
    2.4 结果与讨论第36-44页
        2.4.1 磁性琼脂糖微球制备工艺研究第36-41页
        2.4.2 磁性琼脂糖微球的表征第41-44页
    2.5 本章小结第44-46页
第三章 磁性固定化金属亲和介质纯化ACE的研究第46-66页
    3.1 引言第46页
    3.2 试剂及仪器第46-47页
        3.2.1 材料与试剂第46-47页
        3.2.2 仪器设备第47页
    3.3 实验方法第47-50页
        3.3.1 分析方法第47-49页
        3.3.2 磁性琼脂糖微球的活化第49页
        3.3.3 MAMs-IDA-Zn~(2+)的制备第49页
        3.3.4 MAMs-IDA-Zn~(2+)亲和纯化ACE第49-50页
        3.3.5 MAMs-IDA-Zn~(2+)的脱附实验第50页
    3.4 结果与讨论第50-64页
        3.4.1 标准曲线第50-52页
        3.4.2 磁性琼脂糖微球的活化工艺研究第52-55页
        3.4.3 MAMs-IDA-Zn~(2+)的制备工艺研究第55-58页
        3.4.4 MAMs-IDA-Zn~(2+)用于ACE纯化的研究第58-62页
        3.4.5 MAMs-IDA-Zn~(2+)与ACE的脱附研究第62-64页
    3.5 本章小结第64-66页
第四章 磁性琼脂糖固定化ACE的制备及性质研究第66-77页
    4.1 引言第66页
    4.2 试剂及仪器第66-67页
        4.2.1 材料及试剂第66页
        4.2.2 仪器设备第66-67页
    4.3 实验方法第67-68页
        4.3.1 分析方法第67页
        4.3.2 MAMs-ACE的制备第67页
        4.3.3 MAMs-ACE性质研究第67-68页
    4.4 结果及讨论第68-76页
        4.4.1 MAMs-ACE制备工艺研究第68-71页
        4.4.2 MAMs-ACE的性质研究第71-76页
    4.5 本章小结第76-77页
第五章 磁性微球固定化ACE亲和分离ACE抑制肽第77-95页
    5.1 引言第77页
    5.2 试剂及仪器第77-78页
        5.2.1 材料与试剂第77-78页
        5.2.2 实验仪器第78页
    5.3 实验方法第78-81页
        5.3.1 分析方法第78-79页
        5.3.2 MAMs-ACE的特异性吸附第79页
        5.3.3 MAMs-ACE的非特异性吸附第79-80页
        5.3.4 MAMs-ACE亲和分离ACE抑制肽第80页
        5.3.5 MAMs-ACE亲和吸附的洗脱及重复使用性实验第80页
        5.3.5 RP-HPLC纯化ACE抑制肽第80页
        5.3.6 ACE抑制肽纯度分析第80-81页
        5.3.7 MALDI-TOF/TOF质谱分析第81页
    5.4 实验结果第81-94页
        5.4.1 HLPLP标准曲线第81-82页
        5.4.2 MAMs-ACE的特异性吸附研究第82-84页
        5.4.3 MAMs-ACE的非特异性吸附研究第84-85页
        5.4.4 MAMs-ACE亲和分离ACE抑制肽的工艺研究第85-88页
        5.4.5 MAMs-ACE重复使用性研究第88-89页
        5.4.6 RP-HPLC纯化ACE抑制肽第89-91页
        5.4.7 纯度分析第91-92页
        5.4.8 氨基酸序列分析第92-94页
    5.5 本章小结第94-95页
第六章 ACE及其抑制剂结合的热力学研究第95-108页
    6.1 引言第95页
    6.2 试剂与仪器第95-96页
        6.2.1 材料与试剂第95-96页
        6.2.2 仪器设备第96页
    6.3 实验内容第96-98页
        6.3.1 猪肺ACE米氏常数的测定第96-97页
        6.3.2 GF-6抑制ACE类型研究第97-98页
        6.3.3 ITC测定ACE与Captopril结合过程热力学参数第98页
        6.3.4 ITC测定ACE与GF-6结合过程热力学参数第98页
    6.4 实验结果与讨论第98-106页
        6.4.1 猪肺ACE的动力学参数测定第98-101页
        6.4.2 GF-6对猪肺ACE的抑制类型研究第101-102页
        6.4.3 ACE与captopril结合过程热力学研究第102-103页
        6.4.4 ACE与GF-6结合过程热力学研究第103-106页
    6.5 本章小结第106-108页
第七章 结论与展望第108-111页
    7.1 结论第108-110页
    7.2 创新点第110页
    7.3 展望第110-111页
参考文献第111-124页
致谢第124-125页
攻读学位期间发表的学术论文第125页

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