摘要 | 第6-8页 |
abstract | 第8-9页 |
第一章 引言 | 第13-24页 |
1.1 鸡马立克氏病(MD)及鸡马立克氏病病毒(MDV) | 第13-14页 |
1.2 MDV基因组结构及其重要的功能基因 | 第14-17页 |
1.3 MDV毒力演化 | 第17-19页 |
1.4 MDV感染与宿主免疫反应 | 第19-21页 |
1.5 MDV在宿主中的整合 | 第21-23页 |
1.6 本研究的目的意义 | 第23-24页 |
第二章 MD流行病学检测及MDV的分离鉴定 | 第24-30页 |
2.1 材料 | 第24-25页 |
2.1.1 临床病料 | 第24页 |
2.1.2 SPF鸡/鸭胚 | 第24页 |
2.1.3 主要试剂 | 第24页 |
2.1.4 实验仪器 | 第24-25页 |
2.2 方法 | 第25-26页 |
2.2.1 临床病料的检测 | 第25页 |
2.2.2 MDV的分离鉴定 | 第25页 |
2.2.3 MDV meq基因序列分析 | 第25-26页 |
2.3 结果 | 第26-28页 |
2.3.1 MD流行病学分析 | 第26-27页 |
2.3.2 MDV毒株分离鉴定 | 第27页 |
2.3.3 MDV分离毒株meq基因遗传进化分析 | 第27-28页 |
2.4 讨论 | 第28-30页 |
第三章 MDV分离毒株BS/15 的生物学特性分析 | 第30-41页 |
3.1 材料 | 第30页 |
3.1.1 MDV毒株和疫苗 | 第30页 |
3.1.2 SPF鸡和鸡胚 | 第30页 |
3.1.3 主要试剂和实验仪器 | 第30页 |
3.2 方法 | 第30-32页 |
3.2.1 PCR和IFA鉴定 | 第30页 |
3.2.2 MDV主要致病基因序列比对 | 第30-31页 |
3.2.3 动物实验设计 | 第31-32页 |
3.2.4 组织病理学检查 | 第32页 |
3.2.5 荧光定量PCR检测 | 第32页 |
3.3 结果 | 第32-39页 |
3.3.1 MDV的鉴定结果 | 第32-34页 |
3.3.2 MDV BS/15 致病基因分析 | 第34-35页 |
3.3.3 MD发病率、死亡率和肿瘤率 | 第35-36页 |
3.3.4 生存分析 | 第36-37页 |
3.3.5 组织病理学变化 | 第37页 |
3.3.6 发育障碍和免疫器官损伤 | 第37-38页 |
3.3.7 羽髓中MDV病毒载量 | 第38-39页 |
3.4 讨论 | 第39-41页 |
第四章 MDV感染SPF鸡干扰素差异表达研究 | 第41-50页 |
4.1 材料 | 第41页 |
4.1.1 MDV毒株 | 第41页 |
4.1.2 SPF鸡 | 第41页 |
4.1.3 主要试剂和实验仪器 | 第41页 |
4.2 方法 | 第41-43页 |
4.2.1 动物实验设计 | 第41页 |
4.2.2 RNA提取和反转录 | 第41-42页 |
4.2.3 引物探针设计和荧光定量PCR | 第42页 |
4.2.4 酶联免疫吸附测定 | 第42-43页 |
4.3 结果 | 第43-48页 |
4.3.1 MDV感染SPF鸡免疫器官指数变化 | 第43-44页 |
4.3.2 法氏囊中干扰素在mRNA水平的差异表达 | 第44-45页 |
4.3.3 胸腺中干扰素在mRNA水平的差异表达 | 第45-46页 |
4.3.4 法氏囊中干扰素在蛋白水平的差异表达 | 第46-47页 |
4.3.5 胸腺中干扰素在蛋白水平的差异表达 | 第47-48页 |
4.4 讨论 | 第48-50页 |
第五章 MDV在宿主染色体整合研究 | 第50-56页 |
5.1 材料 | 第50页 |
5.1.1 MDV毒株和细菌人工染色体克隆(BAC) | 第50页 |
5.1.2 SPF鸡 | 第50页 |
5.1.3 主要试剂和实验仪器 | 第50页 |
5.2 方法 | 第50-52页 |
5.2.1 荧光原位杂交方法(FISH)的建立 | 第50-51页 |
5.2.2 MDV在宿主染色体整合分析 | 第51-52页 |
5.3 结果 | 第52-54页 |
5.3.1 DIG-DNA探针的制备 | 第52页 |
5.3.2 FISH检测方法的建立 | 第52-53页 |
5.3.3 MDV在宿主染色体整合分析 | 第53-54页 |
5.4 讨论 | 第54-56页 |
第六章 全文结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-66页 |
致谢 | 第66页 |
项目资助 | 第66-67页 |
作者简历 | 第67页 |