中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
缩略语 | 第12-13页 |
前言 | 第13-17页 |
研究现状、成果 | 第13-15页 |
研究目的、方法 | 第15-17页 |
对象和方法 | 第17-29页 |
1.1 实验对象 | 第17页 |
1.1.1 细胞系及培养 | 第17页 |
1.2 主要试剂与仪器 | 第17-20页 |
1.2.1 细胞培养耗材和试剂 | 第17页 |
1.2.2 免疫沉淀、染色体免疫共沉淀试剂 | 第17-18页 |
1.2.3 RT-qPCR试剂 | 第18页 |
1.2.4 蛋白、DNA相关实验试剂 | 第18页 |
1.2.5 双荧光素酶报告系统 | 第18页 |
1.2.6 主要仪器 | 第18-19页 |
1.2.7 常用主要试剂及溶液的配制 | 第19-20页 |
1.3 实验方法 | 第20-29页 |
1.3.1 基因瞬转处理 | 第20-21页 |
1.3.2 染色质免疫沉淀 | 第21-23页 |
1.3.3 双荧光报告质粒的扩增和鉴定 | 第23-24页 |
1.3.4 双荧光素酶报告系统分析 | 第24页 |
1.3.5 细胞总RNA的提取和RT-qPCR | 第24-26页 |
1.3.6 免疫共沉淀 | 第26-27页 |
1.3.7 Western blot | 第27-28页 |
1.3.8 统计学分析 | 第28-29页 |
结果 | 第29-42页 |
2.1 FOXF2亚型特异性转录抑制调节机制 | 第29-39页 |
2.1.1 在basal-like亚型乳腺癌细胞中FOXF2招募NCOR1和HDAC3形成转录抑制复合物 | 第29-31页 |
2.1.2 FOXF2招募NCOR1和HDAC3修饰下游靶基因启动子区 | 第31-34页 |
2.1.3 FOXF2与NCOR1形成转录抑制复合物抑制下游靶基因启动子区转录活性 | 第34-36页 |
2.1.4 FOXF2与NCOR1形成转录抑制复合物抑制下游靶基因mRNA的表达 | 第36-38页 |
2.1.5 FOXF2与NCOR1形成转录抑制复合物抑制下游靶基因蛋白的表达 | 第38-39页 |
2.2 FOXF2亚型特异性转录激活调节机制 | 第39-42页 |
2.2.1 在Luminal亚型乳腺癌细胞中FOXF2招募p300形成转录激活复合物 | 第39-40页 |
2.2.2 在Luminal亚型乳腺癌细胞中NCOA1介导NF-κB信号通路激活FOXF2表达 | 第40-42页 |
讨论 | 第42-45页 |
结论 | 第45-48页 |
参考文献 | 第48-53页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第53-54页 |
综述 乳腺癌亚型特异性表观遗传学调控机制研究进展 | 第54-64页 |
综述参考文献 | 第59-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
个人简历 | 第65页 |