| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 第1章 实验背景 | 第11-26页 |
| 1.1 空间辐射生物学 | 第11-16页 |
| 1.1.1 空间辐射的特点 | 第11-12页 |
| 1.1.2 空间辐射生物学效应 | 第12-16页 |
| 1.1.2.1 辐射诱发基因组不稳定性的体外研究 | 第12页 |
| 1.1.2.2 辐射诱发基因组不稳定性的体内研究 | 第12-13页 |
| 1.1.2.3 辐射诱发旁效应的体外研究 | 第13-14页 |
| 1.1.2.4 辐射诱发旁效应的体内研究 | 第14-16页 |
| 1.2 辐射生物学效应的表观遗传学研究 | 第16-22页 |
| 1.2.1 DNA甲基化 | 第16-19页 |
| 1.2.1.1 DNA甲基化的重要意义 | 第16-18页 |
| 1.2.1.2 胚胎发育过程中DNA甲基化的变化 | 第18-19页 |
| 1.2.1.3 DNA甲基化的遗传 | 第19页 |
| 1.2.2 辐射可影响表观遗传学甲基化 | 第19-20页 |
| 1.2.3 DNA甲基化的研究现状和方法 | 第20-22页 |
| 1.2.3.1 高效液相色谱法 | 第20-22页 |
| 1.2.3.2 重亚硫酸盐修饰直接测序技术 | 第22页 |
| 1.2.3.3 甲基化敏感扩增多态性 | 第22页 |
| 1.3 本课题目的与意义 | 第22-26页 |
| 第2章 材料与方法 | 第26-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-29页 |
| 2.1.1 C57小鼠的处理 | 第26-28页 |
| 2.1.1.1 F0代雄性C57小鼠辐射 | 第26-27页 |
| 2.1.1.2 F0代雄性C57小鼠交配 | 第27页 |
| 2.1.1.3 F1代C57小鼠交配 | 第27页 |
| 2.1.1.4 C57小鼠取材 | 第27-28页 |
| 2.1.2 主要试剂及酶 | 第28页 |
| 2.1.2.1 动物基因组DNA提取 | 第28页 |
| 2.1.2.2 基因组DNA甲基化双酶切试剂 | 第28页 |
| 2.1.2.3 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳试剂 | 第28页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-35页 |
| 2.2.1 小鼠睾丸基因组DNA的提取 | 第29-30页 |
| 2.2.2 采用甲基化敏感扩增多态性(MSAP)方法检测全基因组CCGG位点甲基化 | 第30-35页 |
| 2.2.2.1 实验步骤 | 第30页 |
| 2.2.2.2 反应体系 | 第30-33页 |
| 2.2.2.3 实验结果数据统计 | 第33-35页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第35-65页 |
| 3.1 小鼠睾丸组织DNA的提取 | 第35页 |
| 3.2 辐射当代(F0代)小鼠旁器官睾丸基因组甲基化分析 | 第35-45页 |
| 3.2.1 F0对照组小鼠睾丸组织DNA甲基化多态性分析 | 第35-39页 |
| 3.2.2 F0辐射组小鼠睾丸组织DNA甲基化水平分析 | 第39-45页 |
| 3.2.3 本节小结 | 第45页 |
| 3.3 子一代(F1代)小鼠睾丸变化分析 | 第45-52页 |
| 3.3.1 F1代对照组小鼠睾丸组织DNA甲基化多态性水平分析 | 第45-47页 |
| 3.3.2 F1代辐射组小鼠睾丸组织DNA甲基化多态性水平分析 | 第47-51页 |
| 3.3.3 本节小结 | 第51-52页 |
| 3.4 子二代(2代)小鼠睾丸变化分析 | 第52-58页 |
| 3.4.1 F2对照组小鼠睾丸组织DNA甲基化水平分析 | 第52-53页 |
| 3.4.2 F2辐射组小鼠睾丸组织DNA甲基化水平分析 | 第53-58页 |
| 3.4.3 本节小结 | 第58页 |
| 3.5 不同世代小鼠睾丸组织DNA甲基化变化比较分析 | 第58-65页 |
| 3.5.1 不同世代小鼠睾丸组织DNA变化比较分析 | 第58-64页 |
| 3.5.2 本节小结 | 第64-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 展望 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 附录 典型MSAP胶图 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 作者简介 | 第75页 |
