| 中文摘要 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-38页 |
| 1.1 引言 | 第14-15页 |
| 1.2 中药类组分的研究概况 | 第15-18页 |
| 1.2.1 中药类组分的研发意义及应用价值 | 第15-16页 |
| 1.2.2 中药类组分系统分离需要解决的关键问题 | 第16-18页 |
| 1.3 中药类组分的提取与分离纯化 | 第18-25页 |
| 1.3.1 中药的提取方法 | 第18-19页 |
| 1.3.2 中药类组分的前处理方法 | 第19-22页 |
| 1.3.2.1 有机溶剂萃取法 | 第19页 |
| 1.3.2.2 沉淀法 | 第19-20页 |
| 1.3.2.3 柱色谱法 | 第20-21页 |
| 1.3.2.4 树脂吸附法 | 第21页 |
| 1.3.2.5 固相萃取法 | 第21-22页 |
| 1.3.2.6 膜分离法 | 第22页 |
| 1.3.2.7 选择性分离方法 | 第22页 |
| 1.3.3 中药类组分的分离纯化方法 | 第22-25页 |
| 1.3.3.1 制备型高速逆流色谱 | 第23页 |
| 1.3.3.2 制备型高效液相色谱 | 第23-25页 |
| 1.4 中药分析与质量评价 | 第25-29页 |
| 1.4.1 新型分离材料和新技术新方法在中药分析中的应用 | 第25-26页 |
| 1.4.2 超临界流体色谱 | 第26页 |
| 1.4.3 二维色谱 | 第26-28页 |
| 1.4.4 系统分离过程中的系统表征 | 第28页 |
| 1.4.5 中药类组分的质量评价 | 第28-29页 |
| 1.5 相关研究对象的概况 | 第29-35页 |
| 1.5.1 荜茇的研究概况 | 第29-31页 |
| 1.5.2 半边莲的研究概况 | 第31-35页 |
| 1.6 本论文的研究思路与研究内容 | 第35-38页 |
| 第2章荜麦生物碱组分二维正相/反相色谱分离纯化及二维超临界流体色谱/超高效液相色谱分离分析 | 第38-63页 |
| 2.1 引言 | 第38-39页 |
| 2.2 荜茇生物碱类组分的制备 | 第39-43页 |
| 2.2.1 实验部分 | 第39-41页 |
| 2.2.1.1 仪器 | 第39页 |
| 2.2.1.2 试剂和样品 | 第39页 |
| 2.2.1.3 样品的制备 | 第39-40页 |
| 2.2.1.4 液相色谱条件 | 第40-41页 |
| 2.2.2 结果与讨论 | 第41-43页 |
| 2.2.2.1 提取溶剂的选择 | 第41页 |
| 2.2.2.2 样品前处理 | 第41-43页 |
| 2.3 荜茇生物碱类组分反相色谱的分离分析及2D-NPLC/RPLC分离纯化方法的建立 | 第43-56页 |
| 2.3.1 实验部分 | 第44-45页 |
| 2.3.1.1 仪器 | 第44页 |
| 2.3.1.2 试剂与样品 | 第44页 |
| 2.3.1.3 色谱条件 | 第44-45页 |
| 2.3.1.4 单体化合物质谱和纯度表征 | 第45页 |
| 2.3.2 结果与讨论 | 第45-56页 |
| 2.3.2.1 荜茇生物碱类组分反相模式的分离分析 | 第45-47页 |
| 2.3.2.2 荜茇生物碱类组分正相模式的分析与制备 | 第47-50页 |
| 2.3.2.3 2D-NPLC/RPLC制备方法的正交性评价 | 第50-51页 |
| 2.3.2.4 第二维反相色谱的分离纯化 | 第51-53页 |
| 2.3.2.5 生物碱单体化合物纯度检测 | 第53-56页 |
| 2.4 2D-UPSFC/UPSFC和2D-UPSFC/UPLC分析方法建立 | 第56-62页 |
| 2.4.1 实验部分 | 第57-58页 |
| 2.4.1.1 仪器与色谱柱 | 第57页 |
| 2.4.1.2 试剂与样品 | 第57页 |
| 2.4.1.3 色谱条件 | 第57-58页 |
| 2.4.2 结果与讨论 | 第58-62页 |
| 2.4.2.1 2D-UPSFC/UPSFC和2D-UPSFC/UPLC体系的正交性评价 | 第58-59页 |
| 2.4.2.2 荜茇生物碱组分的2D-UPSFC/UPLC分离分析 | 第59-62页 |
| 2.5 小结 | 第62-63页 |
| 第3章 荜茇生物碱组分的质量评价及体外细胞模型的初步评价 | 第63-92页 |
| 3.1 引言 | 第63-64页 |
| 3.2 荜茇生物碱类组分的质量评价 | 第64-77页 |
| 3.2.1 实验部分 | 第64-67页 |
| 3.2.1.1 仪器 | 第64页 |
| 3.2.1.2试剂和样品 | 第64-66页 |
| 3.2.1.3 液相色谱条件 | 第66页 |
| 3.2.1.4 溶液配制 | 第66-67页 |
| 3.2.2 结果与讨论 | 第67-77页 |
| 3.2.2.1 色谱和质谱分析条件优化 | 第67页 |
| 3.2.2.2 荜茇生物碱类组分的定性分析 | 第67-74页 |
| 3.2.2.3 荜茇生物碱类组分定量分析 | 第74-77页 |
| 3.3 荜茇生物碱组分及筛选组分的神经保护作用在体外细胞模型的初步筛选 | 第77-90页 |
| 3.3.1 实验部分 | 第77-79页 |
| 3.3.1.1 实验仪器 | 第77页 |
| 3.3.1.2 主要试剂 | 第77-78页 |
| 3.3.1.3 细胞 | 第78页 |
| 3.3.1.4 溶液的配置 | 第78页 |
| 3.3.1.5 细胞培养 | 第78-79页 |
| 3.3.1.6 药物干预方式及MTT法测定细胞活力 | 第79页 |
| 3.3.2 结果与讨论 | 第79-90页 |
| 3.3.2.1 荜茇生物碱组分细胞毒性测定 | 第79-83页 |
| 3.3.2.2 H_2O_2模型的建立及药物干预 | 第83-87页 |
| 3.3.2.3 6-OHDA模型的建立及药物干预 | 第87-90页 |
| 3.4 小结 | 第90-92页 |
| 第4章 半边莲生物碱组分二维混合模式/反相色谱分离分析及黄酮组分二维亲水/反相色谱分离纯化 | 第92-120页 |
| 4.1 引言 | 第92-93页 |
| 4.2 半边莲中黄酮和生物碱类组分的制备 | 第93-101页 |
| 4.2.1 实验部分 | 第93-96页 |
| 4.2.1.1 仪器 | 第93页 |
| 4.2.1.2 试剂和样品 | 第93页 |
| 4.2.1.3提取溶剂的选择 | 第93-94页 |
| 4.2.1.4 半边莲黄酮类组分的制备 | 第94-95页 |
| 4.2.1.5 半边莲生物碱类组分的制备 | 第95-96页 |
| 4.2.1.6 液相色谱和质谱条件 | 第96页 |
| 4.2.2 结果与讨论 | 第96-101页 |
| 4.2.2.1 提取溶剂选择 | 第96-97页 |
| 4.2.2.2 半边莲黄酮类组分的制备 | 第97-100页 |
| 4.2.2.3 半边莲生物碱类组分的制备 | 第100-101页 |
| 4.3 半边莲中黄酮组分反相和亲水模式的分离分析 | 第101-103页 |
| 4.3.1 实验部分 | 第101-102页 |
| 4.3.1.1 仪器 | 第101页 |
| 4.3.1.2 试剂与样品 | 第101页 |
| 4.3.1.3 反相模式色谱条件 | 第101页 |
| 4.3.1.4 亲水模式色谱条件 | 第101-102页 |
| 4.3.2 结果与讨论 | 第102-103页 |
| 4.3.2.1 半边莲黄酮组反相模式的分离分析 | 第102页 |
| 4.3.2.2 半边莲黄酮组分亲水模式的分离分析 | 第102-103页 |
| 4.4 半边莲黄酮组分二维HILIC/RPLC分离纯化方法的建立 | 第103-113页 |
| 4.4.1 实验部分 | 第104-105页 |
| 4.4.1.1 仪器 | 第104页 |
| 4.4.1.2 试剂 | 第104页 |
| 4.4.1.3 色谱条件 | 第104页 |
| 4.4.1.4 单体化合物的质谱和纯度表征 | 第104-105页 |
| 4.4.2 结果与讨论 | 第105-113页 |
| 4.4.2.1 亲水模式流速的考察 | 第105-106页 |
| 4.4.2.2 亲水模式上样量的考察 | 第106页 |
| 4.4.2.3 半边莲黄酮组分二维HILIC/RPLC方法的正交性评价 | 第106-108页 |
| 4.4.2.4 第一维亲水模式的分离纯化 | 第108-109页 |
| 4.4.2.5 第二维反相模式的分离纯化 | 第109-112页 |
| 4.4.2.6结构表征 | 第112-113页 |
| 4.5 半边莲生物碱类组分反相模式和混合模式的分离分析 | 第113-119页 |
| 4.5.1 实验部分 | 第114页 |
| 4.5.1.1 仪器 | 第114页 |
| 4.5.1.2 试剂与样品 | 第114页 |
| 4.5.1.3 色谱和质谱条件 | 第114页 |
| 4.5.1.4 质谱条件 | 第114页 |
| 4.5.2 结果与讨论 | 第114-119页 |
| 4.5.2.1 反相模式分析方法的建立 | 第114-115页 |
| 4.5.2.2 混合模式分析方法的建立 | 第115-119页 |
| 4.6 小结 | 第119-120页 |
| 第5章 半边莲黄酮组分对GPR35受体及斑马鱼血管发育的活性初步评价 | 第120-134页 |
| 5.1 引言 | 第120-121页 |
| 5.2 半边莲黄酮组分在GPR35受体上的活性评价 | 第121-128页 |
| 5.2.1 实验部分 | 第121-122页 |
| 5.2.1.1 仪器与试剂 | 第121页 |
| 5.2.1.2 实验过程 | 第121-122页 |
| 5.2.1.3 半边莲黄酮筛选组分及化合物的活性评价 | 第122页 |
| 5.2.1.4 黄酮化合物的激动分析 | 第122页 |
| 5.2.1.5 黄酮化合物的脱敏分析 | 第122页 |
| 5.2.1.6 黄酮化合物的拮抗分析 | 第122页 |
| 5.2.1.7 数据处理 | 第122页 |
| 5.2.2 结果与讨论 | 第122-128页 |
| 5.2.2.1 半边莲黄酮筛选组分的活性评价 | 第122-123页 |
| 5.2.2.2 半边莲黄酮化合物的活性评价 | 第123-124页 |
| 5.2.2.3 基于GPR35受体的活性验证 | 第124-128页 |
| 5.3 半边莲黄酮组分对斑马鱼胚胎发育的毒性评价及对血管发育的影响 | 第128-132页 |
| 5.3.1 实验部分 | 第128-129页 |
| 5.3.1.1 仪器与试剂 | 第128-129页 |
| 5.3.1.2 实验动物 | 第129页 |
| 5.3.1.3 样品配制 | 第129页 |
| 5.3.1.4 实验方法 | 第129页 |
| 5.3.2 结果与讨论 | 第129-132页 |
| 5.3.2.1 黄酮组分及化合物对斑马鱼胚胎发育的毒性评价 | 第129-131页 |
| 5.3.2.2 黄酮化合物对斑马鱼胚胎血管发育的影响 | 第131-132页 |
| 5.4 小结 | 第132-134页 |
| 第6章 总结与展望 | 第134-135页 |
| 参考文献 | 第135-151页 |
| 攻读博士期间的学术成果 | 第151-152页 |
| 致谢 | 第152-153页 |
| 附录1 | 第153-181页 |
| 附录2 | 第181-184页 |
