| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 引言 | 第12-23页 |
| 1.1 研究背景及意义 | 第12-14页 |
| 1.2 医学成像技术 | 第14-15页 |
| 1.2.1 超声成像技术 | 第14-15页 |
| 1.2.2 核磁共振成像技术 | 第15页 |
| 1.3 超声造影剂 | 第15-19页 |
| 1.3.1 超声造影剂分类 | 第16-17页 |
| 1.3.2 超声造影剂的应用 | 第17-19页 |
| 1.4 核磁共振造影剂 | 第19-20页 |
| 1.5 多功能造影剂的发展 | 第20-21页 |
| 1.6 本文的主要研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 功能性包膜造影剂微泡的制备与物理特性表征 | 第23-36页 |
| 2.1 实验材料、试剂及仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验材料及试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第24页 |
| 2.2 功能性包膜造影剂微泡的制备 | 第24-27页 |
| 2.2.1 磁性纳米粒子的制备 | 第24-25页 |
| 2.2.2 功能性包膜造影剂微泡的制备 | 第25-27页 |
| 2.3 功能性包膜造影剂微泡的物理特性检测 | 第27-32页 |
| 2.3.1 磁性纳米颗粒的特性表征 | 第27页 |
| 2.3.2 功能性包膜造影剂微泡的紫外分光检测 | 第27页 |
| 2.3.3 功能性包膜造影剂微泡的磁性特征 | 第27-28页 |
| 2.3.4 功能性包膜造影剂微泡的TEM检测 | 第28页 |
| 2.3.5 功能性包膜造影剂微泡的X射线能谱分析 | 第28页 |
| 2.3.6 基于AFM的功能性包膜造影剂微泡的形貌特征 | 第28-32页 |
| 2.4 功能性包膜造影剂微泡的物理特性检测结果与讨论 | 第32-35页 |
| 2.4.1 磁性纳米颗粒的特性检测结果 | 第32页 |
| 2.4.2 功能性包膜造影剂微泡包裹SPIO纳米颗粒的含量测定 | 第32-33页 |
| 2.4.3 功能性包膜造影剂微泡的磁性特征 | 第33页 |
| 2.4.4 功能性包膜造影剂微泡的TEM检测结果 | 第33-34页 |
| 2.4.5 功能性包膜造影剂微泡的W射线能谱检测结果 | 第34-35页 |
| 2.4.6 功能性包膜造影剂微泡的三维形貌特征 | 第35页 |
| 2.5 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 功能性包膜造影剂微泡的机械特性与声学特性 | 第36-55页 |
| 3.1 基于AFM的功能性包膜造影剂微泡机械特性的理论研究 | 第36-38页 |
| 3.1.1 原子力显微镜测量微泡包膜机械特性的基本原理 | 第36-38页 |
| 3.2 功能性包膜造影剂微泡的机械特性实验研究方法 | 第38-39页 |
| 3.2.1 实验材料与仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第39页 |
| 3.3 功能性包膜造影剂微泡的机械特性实验结果 | 第39-41页 |
| 3.3.1 SPIO纳米颗粒浓度对功能性包膜造影剂微泡机械特性的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.2 白蛋白微泡包膜造影剂的有效硬度与微泡直径的关系 | 第40页 |
| 3.3.3 功能性包膜造影剂微泡的有效硬度与微泡直径的关系 | 第40-41页 |
| 3.4 功能性包膜造影剂微泡的声学特性理论研究 | 第41-46页 |
| 3.4.1 Rayleigh-Plesset(RP)方程 | 第41-42页 |
| 3.4.2 包膜气泡的线性动力学方程 | 第42-44页 |
| 3.4.3 包膜气泡的非线性动力学方程 | 第44-46页 |
| 3.5 功能性包膜造影剂微泡的声学特性实验研究 | 第46-49页 |
| 3.5.1 功能性包膜造影剂微泡的包膜厚度测量 | 第46-47页 |
| 3.5.2 功能性包膜造影剂微泡的粒径分布与微泡浓度评估 | 第47页 |
| 3.5.3 功能性包膜造影剂微泡的粘弹特性评估 | 第47-48页 |
| 3.5.4 功能性包膜造影剂微泡的声衰减特性测量 | 第48-49页 |
| 3.6 功能性包膜造影剂微泡的声学特性实验结果 | 第49-54页 |
| 3.6.1 功能性包膜造影剂微泡的包膜厚度测量结果 | 第49-50页 |
| 3.6.2 功能性包膜造影剂微泡的粒径分布与浓度 | 第50-51页 |
| 3.6.3 功能性包膜造影剂微泡的弹性特性 | 第51-53页 |
| 3.6.4 功能性包膜造影剂微泡的声衰减特性与粘性系数评估 | 第53-54页 |
| 3.7 本章小结 | 第54-55页 |
| 第四章 功能性包膜造影剂微泡在临床诊断与治疗中的应用 | 第55-71页 |
| 4.1 实验材料、试剂及仪器 | 第55-56页 |
| 4.1.1 实验材料及试剂 | 第55-56页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第56页 |
| 4.2 体外超声成像 | 第56-58页 |
| 4.2.1 体外超声成像实验 | 第56-57页 |
| 4.2.2 体外超声成像结果 | 第57-58页 |
| 4.3 体外MRI成像 | 第58-60页 |
| 4.3.1 体外MRI成像实验 | 第58页 |
| 4.3.2 体外MRI成像结果 | 第58-60页 |
| 4.4 超声介导基因转染的作用机理 | 第60-62页 |
| 4.4.1 超声介导基因转染的作用机理 | 第60-62页 |
| 4.4.2 超声空化强度测量方法 | 第62页 |
| 4.5 功能性包膜造影剂微泡在超声激励下增强基因转染的实验研究 | 第62-65页 |
| 4.5.1 细胞培养 | 第63页 |
| 4.5.2 超声协助VEGF_(165)转染与超声空化探测系统 | 第63-64页 |
| 4.5.3 惯性空化剂量检测 | 第64页 |
| 4.5.4 绿色荧光检测 | 第64-65页 |
| 4.5.5 采用ELISA量化评估VEGF_(165)表达 | 第65页 |
| 4.5.6 细胞活性评估 | 第65页 |
| 4.5.7 统计分析 | 第65页 |
| 4.6 功能性包膜造影剂微泡在超声激励下增强基因转染的实验结果 | 第65-70页 |
| 4.6.1 超声协助VEGF_(165)转染的绿色荧光表达评估 | 第65-66页 |
| 4.6.2 SPIO纳米颗粒浓度对惯性空化剂量的影响 | 第66-67页 |
| 4.6.3 SPIO纳米颗粒浓度对细胞活性的影响 | 第67-68页 |
| 4.6.4 SPIO纳米颗粒浓度对VEGF_(165)蛋白表达的影响 | 第68-70页 |
| 4.7 本章小结 | 第70-71页 |
| 第五章 超声结合造影剂增强水凝胶支架材料孔隙率与通透性的机理研究 | 第71-84页 |
| 5.1 实验材料、试剂及仪器 | 第72-73页 |
| 5.1.1 实验材料及试剂 | 第72页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第72-73页 |
| 5.2 研究方法与步骤 | 第73-77页 |
| 5.2.1 三维水凝胶支架的制备 | 第73页 |
| 5.2.2 LIPUS辐照系统 | 第73-74页 |
| 5.2.3 LIPUS协助增强支架材料孔隙率和通透性的作用机理 | 第74-75页 |
| 5.2.4 三维水凝胶支架的孔隙率评估 | 第75-76页 |
| 5.2.5 三维水凝胶支架的通透性评估 | 第76页 |
| 5.2.6 三维水凝胶支架中HeLa细胞的绿色荧光观察 | 第76-77页 |
| 5.2.7 统计分析 | 第77页 |
| 5.3 研究结果 | 第77-83页 |
| 5.3.1 三维水凝胶支架的孔隙率评估 | 第77-78页 |
| 5.3.2 三维水凝胶支架的通透性评估 | 第78-81页 |
| 5.3.3 三维水凝胶支架中HeLa细胞的绿色荧光观察 | 第81-83页 |
| 5.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 第六章 总结与展望 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-99页 |
| 博士阶段发表论文 | 第99-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
