| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 缩略词表 | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-10页 |
| 1.1 帕金森病的病因概述 | 第8页 |
| 1.2 PD药物治疗研究进展 | 第8-9页 |
| 1.3 马钱苷研究依据 | 第9-10页 |
| 第二章 实验过程及方法 | 第10-23页 |
| 2.1 实验试剂及仪器 | 第10-14页 |
| 2.1.1 试剂及耗材 | 第10-12页 |
| 2.1.2 仪器 | 第12-13页 |
| 2.1.3 主要试剂配制 | 第13-14页 |
| 2.1.4 实验对象 | 第14页 |
| 2.2 MPTP诱导的PD动物模型的建立以及脑组织取材 | 第14-17页 |
| 2.2.1 MPTP诱导的PD小鼠模型的建立和马钱苷给药处理 | 第14-15页 |
| 2.2.2 组织取材 | 第15-17页 |
| 2.3 高效液相色谱法（HPLC）检测小鼠脑纹状体内多巴胺（DA）和 3,4-二羟基苯乙酸（DOPAC）含量 | 第17页 |
| 2.4 脑组织中总蛋白的提取以及蛋白质免疫印迹实验 | 第17-19页 |
| 2.4.1 脑组织中总蛋白的提取 | 第17页 |
| 2.4.2 脑组织中总蛋白的定量（BCA法） | 第17页 |
| 2.4.3 蛋白质免疫印迹实验（Western blot） | 第17-19页 |
| 2.5 免疫荧光实验 | 第19-20页 |
| 2.5.1 冰冻切片的制备 | 第19页 |
| 2.5.2 免疫荧光染色 | 第19-20页 |
| 2.6 酶联免疫吸附测定（Elisa）检测TNF-α 含量 | 第20-21页 |
| 2.7 行为学爬杆实验 | 第21页 |
| 2.8 细胞吖啶橙染色 | 第21-22页 |
| 2.8.1 PC12细胞培养 | 第21-22页 |
| 2.8.2 细胞给药 | 第22页 |
| 2.8.3 吖啶橙染色 | 第22页 |
| 2.9 统计学分析 | 第22-23页 |
| 第三章 实验结果 | 第23-39页 |
| 3.1 马钱苷对MPTP诱导的PD小鼠纹状体内多巴胺、DOPAC的含量和酪氨酸羟化酶(TH) 表达的影响 | 第23-25页 |
| 3.2 马钱苷对MPTP诱导的PD小鼠黑质区小胶质细胞和星形胶质细胞的作用 | 第25-28页 |
| 3.3 马钱苷对MPTP诱导的PD小鼠纹状体内TNF-α 和caspase-3 的表达的影响 | 第28-30页 |
| 3.4 马钱苷对MPTP诱导的PD小鼠纹状体内NF-κB，p38和c-Abl的表达影响 | 第30-33页 |
| 3.5 马钱苷对MPTP诱导的PD小鼠纹状体内LC3-Ⅱ的表达的影响 | 第33-35页 |
| 3.6 马钱苷对MPTP诱导的PC12高分化细胞内酸性自噬泡水平的影响 | 第35-37页 |
| 3.7 马钱苷对MPTP诱导的PD小鼠脑内纹状体Drp1的表达影响 | 第37页 |
| 3.8 马钱苷对MPTP诱导的PD小鼠运动能力的影响 | 第37-39页 |
| 第四章 主要结论与展望 | 第39-42页 |
| 4.1 主要结论 | 第39-41页 |
| 4.1.1 马钱苷能够挽救MPTP诱导的PD小鼠脑内纹状体多巴胺含量的降低并抑制TH表达的下降，提示其神经保护作用 | 第39页 |
| 4.1.2 马钱苷抑制MPTP诱导的PD小鼠黑质区小胶质细胞和星形胶质细胞的激活以及炎症因子TNF-α 和caspase-3 的表达，提示其抗炎作用 | 第39-40页 |
| 4.1.3 马钱苷降低MPTP诱导的PD小鼠纹状体内NF-κB，p38和c-Abl的表达，提示其可能通过c-Abl-p38-NFκB通路发挥抗炎作用 | 第40页 |
| 4.1.4 马钱苷降低MPTP诱导的PD小鼠纹状体内LC3-Ⅱ和Drp1的表达和MPTP处理的PC12细胞内酸性自噬泡水平，提示其可能也作用于自噬和线粒体 | 第40-41页 |
| 4.2 展望 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第46页 |
