酶解卵清活性多肽的制备及其在细胞培养中的应用
| 缩略语表 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-21页 |
| 1 生物活性肽概述 | 第12-14页 |
| 1.1 生物活性肽的制备方法 | 第12-13页 |
| 1.2 生物活性肽的研究现状 | 第13-14页 |
| 2 蛋白水解物在细胞中的应用概述 | 第14-17页 |
| 2.1 蛋白水解物的制备方法 | 第15页 |
| 2.2 蛋白质水解物在细胞中的应用现状 | 第15-17页 |
| 3 卵清蛋白水解物概述 | 第17-19页 |
| 3.1 卵清活性肽的制备方法 | 第18页 |
| 3.2 卵清活性多肽的应用现状 | 第18-19页 |
| 4 研究目的与意义 | 第19-20页 |
| 5 研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 酶解卵清多肽的制备工艺研究 | 第21-32页 |
| 1 材料与设备 | 第21页 |
| 1.1 试验材料 | 第21页 |
| 1.2 试验设备 | 第21页 |
| 2 试验方法 | 第21-25页 |
| 2.1 酶解过程 | 第21-22页 |
| 2.2 水解度的测定 | 第22-23页 |
| 2.3 酶筛选 | 第23页 |
| 2.4 单因素试验 | 第23-24页 |
| 2.5 工艺条件的优化 | 第24-25页 |
| 2.6 统计方法 | 第25页 |
| 3 试验结果 | 第25-30页 |
| 3.1 酶筛选结果 | 第25-26页 |
| 3.2 单因素试验结果 | 第26-29页 |
| 3.3 工艺条件优化结果 | 第29-30页 |
| 4 本章小结 | 第30-32页 |
| 第三章 卵清蛋白水解物的理化性质分析 | 第32-40页 |
| 1 材料与设备 | 第32页 |
| 1.1 试验材料 | 第32页 |
| 1.2 试验设备 | 第32页 |
| 2 试验方法 | 第32-34页 |
| 2.1 溶解度的测定 | 第32页 |
| 2.2 起泡性的测定 | 第32-33页 |
| 2.3 浊度的测定 | 第33页 |
| 2.4 热稳定性的测定 | 第33页 |
| 2.5 分子量检测 | 第33-34页 |
| 2.6 游离氨基酸含量的测定 | 第34页 |
| 3 实验结果 | 第34-39页 |
| 3.1 溶解度试验结果 | 第34-35页 |
| 3.2 热稳定性试验结果 | 第35页 |
| 3.3 浊度试验结果 | 第35-36页 |
| 3.4 起泡性试验结果 | 第36页 |
| 3.5 分子量试验结果 | 第36-37页 |
| 3.6 氨基酸试验结果 | 第37-39页 |
| 4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 酶解卵清多肽在细胞培养中应用研究 | 第40-52页 |
| 1 材料与设备 | 第40页 |
| 1.1 试验材料 | 第40页 |
| 1.2 试验设备 | 第40页 |
| 2 试验方法 | 第40-42页 |
| 2.1 细胞用高压酶解卵清蛋白的制备及纯化 | 第40-41页 |
| 2.2 酶解卵清多肽添加量测试 | 第41页 |
| 2.3 细胞生长曲线测试 | 第41页 |
| 2.4 细胞传代培养效果观察 | 第41页 |
| 2.5 降血清测试 | 第41-42页 |
| 2.6 多肽组分分离与细胞培养效果检测 | 第42页 |
| 3 试验结果 | 第42-50页 |
| 3.1 BHK-21细胞测试结果 | 第42-46页 |
| 3.2 Marc-145细胞测试结果 | 第46-50页 |
| 4 本章小结 | 第50-52页 |
| 全文结论 | 第52-53页 |
| 1 高压酶解卵清多肽制备工艺的确定 | 第52页 |
| 2 高压酶解卵清多肽理化性质的确定 | 第52页 |
| 3 高压酶解卵清多肽用于细胞培养的效果 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 附录 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第60页 |
| 硕士期间参与的课题研究 | 第60页 |
| 硕士期间发表的论文与专利 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
