| 中文摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一章 大叶蛇葡萄不同器官黄酮类成分的含量分析 | 第14-19页 |
| 1 材料与仪器 | 第14-15页 |
| 1.1 实验材料 | 第14页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第14页 |
| 1.3 实验试剂 | 第14页 |
| 1.4 试剂的配制 | 第14-15页 |
| 2 实验方法 | 第15-16页 |
| 2.1 供试品溶液的制备 | 第15页 |
| 2.2 对照品溶液的制备 | 第15页 |
| 2.3 色谱条件 | 第15-16页 |
| 2.4 样品含量测定 | 第16页 |
| 3 实验结果 | 第16-18页 |
| 3.1 混合对照品色谱峰 | 第16-17页 |
| 3.2 含量测定结果 | 第17-18页 |
| 4 讨论 | 第18-19页 |
| 第二章 大叶蛇葡萄转录组测序及差异表达基因分析 | 第19-45页 |
| 1 材料与仪器 | 第19-20页 |
| 1.1 实验材料 | 第19页 |
| 1.2 仪器及设备 | 第19页 |
| 1.3 实验试剂 | 第19-20页 |
| 2 实验方法 | 第20-25页 |
| 2.1 总RNA的提取 | 第20-21页 |
| 2.2 总RNA的质量检测 | 第21页 |
| 2.3 文库制备 | 第21页 |
| 2.4 转录组测序 | 第21-22页 |
| 2.5 原始数据预处理 | 第22页 |
| 2.6 转录本拼接 | 第22-23页 |
| 2.7 功能注释 | 第23-24页 |
| 2.8 表达丰度估计 | 第24页 |
| 2.9 差异表达分析 | 第24-25页 |
| 3 实验结果 | 第25-43页 |
| 3.1 总RNA质量检测结果 | 第25-28页 |
| 3.2 转录本组装结果 | 第28-29页 |
| 3.3 功能注释结果 | 第29-32页 |
| 3.4 样本间相关性分析结果 | 第32-35页 |
| 3.5 差异表达基因分析结果 | 第35-43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 4.1 转录组测序质量的评价 | 第43-44页 |
| 4.2 叶、花和果实样品间差异的分析 | 第44-45页 |
| 第三章 大叶蛇葡萄体内影响黄酮类成分生物合成的关键酶分析 | 第45-59页 |
| 1 材料与仪器 | 第45页 |
| 1.1 实验材料 | 第45页 |
| 1.2 仪器及设备 | 第45页 |
| 1.3 实验试剂 | 第45页 |
| 2 实验方法 | 第45-49页 |
| 2.1 黄酮类成分生物合成关键酶基因筛选 | 第45页 |
| 2.2 实时荧光定量 PCR 引物设计 | 第45-46页 |
| 2.3 实时荧光定量 PCR 引物特异性验证 | 第46-47页 |
| 2.4 内参基因的筛选 | 第47-48页 |
| 2.5 实时荧光定量PCR检测 | 第48-49页 |
| 3 实验结果 | 第49-58页 |
| 3.1 黄酮类成分生物合成关键酶基因筛选结果 | 第49-54页 |
| 3.2 内参基因筛选结果 | 第54页 |
| 3.3 引物特异性验证结果 | 第54-56页 |
| 3.4 实时荧光定量PCR验证结果 | 第56-58页 |
| 4 讨论 | 第58-59页 |
| 第四章 大叶蛇葡萄黄酮类成分生物合成分子机制的探讨 | 第59-63页 |
| 1 数据材料 | 第59-60页 |
| 2 分析结果 | 第60-61页 |
| 3 讨论 | 第61-63页 |
| 结语与创新 | 第63-64页 |
| 附录 | 第64-74页 |
| 一、附图 | 第64-73页 |
| 二、攻读硕士期间已发表论文 | 第73-74页 |
| 文献综述 | 第74-81页 |
| 参考文献 | 第81-87页 |
| 致谢 | 第87页 |