| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-28页 |
| 1 水稻株高功能基因研究 | 第13-20页 |
| ·GA合成及信号传导相关基因 | 第13-15页 |
| ·BR合成及信号传导相关基因 | 第15-19页 |
| ·BR 生物合成途径相关基因 | 第15-18页 |
| ·BR 信号转导途径相关基因 | 第18-19页 |
| ·独角金内酯及其他株高相关基因 | 第19-20页 |
| 2 水稻矮化突变体研究进展 | 第20-23页 |
| ·突变体的来源 | 第20-23页 |
| ·自然突变 | 第21页 |
| ·物理、化学诱变 | 第21-22页 |
| ·插入突变 | 第22-23页 |
| ·水稻突变体库 | 第23页 |
| 3 水稻基因定位 | 第23-27页 |
| ·基因定位分子标记 | 第24-25页 |
| ·水稻基因定位研究 | 第25-27页 |
| 4 研究目的及意义 | 第27-28页 |
| 第二章 黎平杂边禾的诱变及dss-1 突变体鉴定 | 第28-42页 |
| 1. 材料 | 第28-29页 |
| ·植物材料 | 第28-29页 |
| ·仪器及试剂 | 第29页 |
| 2 研究方法 | 第29-32页 |
| ·EMS诱变、筛选、鉴定贵州地方水稻突变体 | 第29页 |
| ·dss-1 突变体形态与表型观察 | 第29-30页 |
| ·dss-1 突变体细胞学分析 | 第30-31页 |
| ·dss-1 突变体对外源GA3敏感性分析 | 第31-32页 |
| ·dss-1 突变体α-淀粉酶活性检测 | 第32页 |
| ·dss-1 突变体对BR敏感性分析 | 第32页 |
| ·dss-1 突变体暗形态建成分析 | 第32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-40页 |
| ·dss-1 突变对农艺性状表型特征的影响 | 第32-34页 |
| ·dss-1 突变体茎节间细胞学形态的影响 | 第34-36页 |
| ·dss-1 突变对外源GA3的响应 | 第36-37页 |
| ·dss-1 突变对α-淀粉酶表达活性的影响 | 第37页 |
| ·dss-1 突变对暗形态建成的影响 | 第37-38页 |
| ·dss-1 突变对BR敏感性的影响 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 dss-1 突变体保护酶活性与光合生理特性 | 第42-48页 |
| 1 材料 | 第42页 |
| 2 研究方法 | 第42-44页 |
| ·光合色素测定 | 第42-43页 |
| ·叶绿素荧光参数测定 | 第43页 |
| ·光合速率测定 | 第43页 |
| ·保护酶活性及MDA含量测定 | 第43-44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-46页 |
| ·光合色素含量变化 | 第44页 |
| ·叶绿素荧光参数变化 | 第44-45页 |
| ·光合速率变化 | 第45页 |
| ·保护酶活性及丙二醛(MDA)含量变化 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46-48页 |
| 第四章 dss-1 BR相关基因表达分析 | 第48-55页 |
| 1 材料 | 第49页 |
| ·植物材料 | 第49页 |
| ·仪器及试剂 | 第49页 |
| 2 研究方法 | 第49-51页 |
| ·引物设计 | 第49-50页 |
| ·水稻总RNA提取 | 第50页 |
| ·总RNA浓度检测 | 第50-51页 |
| ·cDNA的合成 | 第51页 |
| ·Real-time PCR反应 | 第51页 |
| 3 结果与分析 | 第51-54页 |
| ·RNA浓度检测结果 | 第51-52页 |
| ·dss-1 突变对BR合成相关基因表达的影响 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-55页 |
| 第五章 dss-1 遗传分析及基因定位 | 第55-64页 |
| 1 材料 | 第56页 |
| ·植物材料 | 第56页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第56页 |
| 2 研究方法 | 第56-58页 |
| 3 结果与分析 | 第58-62页 |
| ·突变体遗传分析 | 第58-60页 |
| ·dss-1 突变体基因初定位 | 第60-62页 |
| 4 讨论 | 第62-64页 |
| 第六章 结论、创新点与展望 | 第64-67页 |
| 1 结论 | 第64-65页 |
| 2 创新点 | 第65页 |
| 3 展望 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 附录 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 声明 | 第80-81页 |