| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 1 引言 | 第13-25页 |
| ·选题背景 | 第13-14页 |
| ·与低氧诱导因子相关的研究 | 第14-16页 |
| ·低氧/缺氧的生理学作用 | 第14-15页 |
| ·动物缺氧时HIF-1 的表达与调控 | 第15-16页 |
| ·肿瘤抑制因子p53的基本结构与功能 | 第16-20页 |
| ·棕色田鼠和布氏田鼠基本情况简介 | 第20-22页 |
| ·棕色田鼠 | 第20-21页 |
| ·布氏田鼠 | 第21-22页 |
| ·研究内容 | 第22-23页 |
| ·研究目的和意义 | 第23-25页 |
| 2 急性低氧暴露后复氧对体重变化的影响 | 第25-35页 |
| ·材料与方法 | 第25-28页 |
| ·实验动物 | 第25-26页 |
| ·实验仪器设备及试剂 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-27页 |
| ·实验数据处理与分析 | 第27-28页 |
| ·结果 | 第28-33页 |
| ·各个处理组动物的个性化得分 | 第28-30页 |
| ·急性低氧后复氧时间对动物体重变化的影响 | 第30-32页 |
| ·个性化与动物体重变化的相关性分析 | 第32-33页 |
| ·讨论 | 第33-35页 |
| ·各个处理组动物的个性化得分 | 第33页 |
| ·急性低氧后复氧时间对动物体重变化的影响 | 第33页 |
| ·个性化与动物体重变化的相关性分析 | 第33-35页 |
| 3 急性低氧暴露后复氧对p53和HIF-1α 基因表达的影响 | 第35-69页 |
| ·材料与方法 | 第35-43页 |
| ·实验动物 | 第35页 |
| ·实验仪器设备及试剂 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-43页 |
| ·实验数据处理与分析 | 第43页 |
| ·结果 | 第43-65页 |
| ·模板RNA完整性检验及反转录结果 | 第43-45页 |
| ·HIF-1α 的相关结果 | 第45-55页 |
| ·p53的相关结果 | 第55-63页 |
| ·HIF-1α 和p53相关性分析 | 第63-64页 |
| ·HIF-1α 和AI相关性分析 | 第64-65页 |
| ·讨论 | 第65-69页 |
| ·HIF-1α m RNA表达量变化 | 第65页 |
| ·p53 m RNA表达量变化 | 第65-66页 |
| ·HIF-1α 和p53相关性分析 | 第66页 |
| ·HIF-1α 和AI相关性分析 | 第66-69页 |
| 4 急性低氧暴露后复氧对海马区CA1细胞的影响 | 第69-81页 |
| ·材料与方法 | 第69-73页 |
| ·实验动物 | 第69-70页 |
| ·实验仪器设备及试剂 | 第70页 |
| ·实验方法 | 第70-73页 |
| ·实验数据处理与分析 | 第73页 |
| ·结果 | 第73-79页 |
| ·两种鼠不同复氧时间细胞凋亡切片 | 第73-75页 |
| ·脑组织海马区凋亡情况 | 第75-77页 |
| ·HIF-1α 与细胞凋亡相关性分析 | 第77-79页 |
| ·讨论 | 第79-81页 |
| 5 全文总结 | 第81-85页 |
| ·主要研究内容与结果 | 第81-82页 |
| ·主要结论 | 第82-83页 |
| ·创新点 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-93页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文和研究成果 | 第93-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |