| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一章 引言 | 第9-22页 |
| ·活性肽的简述 | 第9-10页 |
| ·定义及分类 | 第9页 |
| ·活性肽的结构特点 | 第9-10页 |
| ·活性肽的研究进展 | 第10页 |
| ·多肽合成的原理和基本方法 | 第10-12页 |
| ·多肽液相合成 | 第11页 |
| ·多肽固相合成 | 第11-12页 |
| ·固相合成活性肽 | 第12-20页 |
| ·固相合成多肽步骤 | 第12-15页 |
| ·固相合成的要求 | 第12页 |
| ·固相合成的基本过程 | 第12-13页 |
| ·氨基酸的保护策略 | 第13-14页 |
| ·载体树脂 | 第14-15页 |
| ·肽键缩合试剂 | 第15页 |
| ·固相合成多肽的检测、纯化与分析 | 第15-20页 |
| ·固相合成多肽检测 | 第15-16页 |
| ·多肽的分离纯化 | 第16-18页 |
| ·多肽分析 | 第18-20页 |
| ·本课题研究的意义和主要内容 | 第20-22页 |
| ·研究意义 | 第20页 |
| ·研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-33页 |
| ·实验仪器设备、材料及试剂 | 第22-25页 |
| ·实验仪器 | 第22-23页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·固相合成活性肽所用材料 | 第23-24页 |
| ·生物活性验证原材料 | 第24页 |
| ·固相合成使用试剂 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-33页 |
| ·固相合成活性肽装置与流程 | 第25-26页 |
| ·固相合成活性肽实验装置 | 第25页 |
| ·正交设计实验装置 | 第25-26页 |
| ·反应流程图 | 第26页 |
| ·固相合成活性肽步骤 | 第26-29页 |
| ·氨基酸与 Wang-Resin 的连接 | 第26页 |
| ·Fmoc 吸光法测定第一步连接率 | 第26-27页 |
| ·氨基酸保护基的脱除 | 第27-28页 |
| ·DCC/HOBt 法缩合剩余氨基酸 | 第28页 |
| ·树脂-氨基酸复合物的切割 | 第28-29页 |
| ·粗纯活性肽的反向 RP-HPLC 监测分析 | 第29页 |
| ·正交试验工艺优化 | 第29-30页 |
| ·合成多肽活性验证 | 第30-33页 |
| ·HepG2、SGC7901 细胞株传代 | 第30-31页 |
| ·细胞计数法 | 第31页 |
| ·接种 96 孔板，MTT 活性验证 | 第31-33页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第33-64页 |
| ·树脂和首个氨基酸连接率优化 | 第33-52页 |
| ·Fmoc 吸光法分析 | 第33-52页 |
| ·Fmoc 吸光法标准曲线的建立 | 第33-34页 |
| ·氨基酸-树脂连接率正交试验表 | 第34-51页 |
| ·正交优化结果分析 | 第51-52页 |
| ·优化工艺方法合成活性肽 | 第52-58页 |
| ·优化工艺指导合成 VR-6、LS-7 | 第52-53页 |
| ·优化工艺合成 VR-644 | 第52-53页 |
| ·优化工艺合成 LS-745 | 第53页 |
| ·合成活性肽的分析 | 第53-56页 |
| ·未优化前合成 VR-6、LS-7 分析 | 第53-56页 |
| ·液质联用分析合成多肽 | 第56-58页 |
| ·固相合成多肽的活性验证 | 第58-64页 |
| ·MTT 法检测细胞凋亡 | 第58-59页 |
| ·活性肽对肝癌 HepG2 和胃癌 SGC7901 细胞抑制作用 | 第59-64页 |
| ·LS-7 和 VR-6 对胃癌 SGC7901 细胞抑制作用 | 第59-61页 |
| ·LS-7 和 VR-6 对肝癌 HepG2 细胞抑制作用 | 第61-64页 |
| 结论与展望 | 第64-66页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 个人简历 | 第71页 |
| 研究成果 | 第71页 |
