| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-15页 |
| 第一章 引言 | 第15-41页 |
| ·总体研究思路 | 第15-17页 |
| ·β-胡萝卜素 | 第17-19页 |
| ·β-胡萝卜素的分子结构 | 第17-18页 |
| ·β-胡萝卜素的合成 | 第18页 |
| ·β-胡萝卜素与光合作用 | 第18-19页 |
| ·虾青素 | 第19-26页 |
| ·虾青素的应用价值 | 第21-22页 |
| ·虾青素的合成与抗逆 | 第22页 |
| ·虾青素参与雨生红球藻抗逆仍存在争议和待解决的主要问题 | 第22-26页 |
| ·三种绿藻与类胡萝卜素的积累 | 第26-32页 |
| ·雨生红球藻 | 第26-29页 |
| ·雨生红球藻蛋白质组与膜蛋白质组研究进展 | 第29-30页 |
| ·盐藻 | 第30-31页 |
| ·浒苔概述 | 第31-32页 |
| ·类囊体膜蛋白 | 第32-34页 |
| ·类囊体膜蛋白的组成 | 第33页 |
| ·与类囊体膜蛋白结合的类胡萝卜素 | 第33-34页 |
| ·蛋白质组研究技术 | 第34-41页 |
| ·基于仪器分类的蛋白组研究的技术路线 | 第34-35页 |
| ·基于所分析样品的蛋白组研究技术路线 | 第35-36页 |
| ·定量蛋白质组学 | 第36-37页 |
| ·类囊体膜蛋白组研究的特殊性 | 第37页 |
| ·本研究中使用的蛋白组技术路线 | 第37-41页 |
| 第二章 虾青素合成过程中雨生红球藻细胞比较蛋白组研究 | 第41-78页 |
| 引言 | 第41-43页 |
| ·材料与方法 | 第43-55页 |
| ·藻种与培养方法 | 第43-45页 |
| ·细胞形态观测与细胞计数 | 第45页 |
| ·虾青素提取和定量 | 第45-46页 |
| ·77 K 低温荧光光谱测量 | 第46页 |
| ·叶绿素荧光测量 | 第46页 |
| ·可溶性蛋白提取 | 第46-47页 |
| ·类囊体膜蛋白粗提 | 第47页 |
| ·类囊体膜纯化 | 第47-48页 |
| ·类囊体膜色素提取和分析 | 第48页 |
| ·可溶性蛋白定量 | 第48-49页 |
| ·SDS-PAGE 电泳检测可溶性蛋白提取质量 | 第49-50页 |
| ·2D-DIGE 双向电泳 | 第50-51页 |
| ·2D-DIGE 凝胶图像分析 | 第51页 |
| ·连续蔗糖密度梯度离心分离类囊体膜复合体 | 第51-52页 |
| ·超离后蛋白条带分层吸取以及 SDS-PAGE 电泳分析 | 第52页 |
| ·类囊体膜 2D BN-SDS PAGE 差异蛋白分析 | 第52-54页 |
| ·胶内蛋白酶解 | 第54页 |
| ·胶内多肽萃取 | 第54页 |
| ·使用 MALDI-TOF-TOF 二级质谱进行差异蛋白鉴定 | 第54页 |
| ·MALDI-TOF-TOF 质谱数据分析 | 第54-55页 |
| ·蛋白功能分析 | 第55页 |
| ·结果 | 第55-71页 |
| ·细胞形态的变化 | 第55-58页 |
| ·四种不同类型细胞（GV、GR、OR、RC）的虾青素含量 | 第58-59页 |
| ·四种细胞总可溶性蛋白含量的变化 | 第59页 |
| ·四种不同类型细胞（GV、GR、OR、RC）的 77K 低温荧光光谱 | 第59-60页 |
| ·四种不同类型细胞（GV、GR、OR、RC）叶绿素荧光差异 | 第60-62页 |
| ·不同类型细胞总可溶蛋白 SDS-PAGE 结果 | 第62页 |
| ·类囊体膜蛋白提取 | 第62-63页 |
| ·类囊体膜色素组成的变化 | 第63-64页 |
| ·三种细胞总可溶性蛋白 2D-DIGE 差异分析 | 第64-66页 |
| ·连续密度梯度离心分析的类囊体膜条带差异变化 | 第66-67页 |
| ·DM 增溶后膜蛋白 SDS-PAGE 解析的差异蛋白 | 第67-69页 |
| ·2D BN-SDS-PAGE 解析的差异膜蛋白 | 第69页 |
| ·类囊体膜差异蛋白鉴定和功能分析 | 第69-71页 |
| ·讨论 | 第71-78页 |
| ·虾青素的积累与细胞形态的变化 | 第71-72页 |
| ·四种细胞在类囊体膜的光系统上存在光能吸收和利用的重新分配 | 第72-73页 |
| ·虾青素合成过程中 OR 细胞与 RC 细胞对逆境的适应 | 第73页 |
| ·GV 细胞具有潜在的较高的固碳能力和细胞分裂能力 | 第73-74页 |
| ·氧化还原酶类在 GV 细胞中较高表达 | 第74-75页 |
| ·RC 孢子休眠状态下调的蛋白表明细胞内代谢缓慢 | 第75页 |
| ·虾青素积累的不同阶段，类囊体膜结构得到保持 | 第75-76页 |
| ·细胞类囊体膜上出现的调控蛋白 | 第76-77页 |
| ·虾青素酯合成所需要的碳源供给 | 第77-78页 |
| 第三章 盐藻和雨生红球藻响应强光逆境时的类囊体膜蛋白组变化 | 第78-106页 |
| 引言 | 第78-80页 |
| ·材料与方法 | 第80-87页 |
| ·藻种培养和类囊体膜提取 | 第80-81页 |
| ·叶绿素荧光测量 | 第81页 |
| ·类囊体膜成分提取和纯化 | 第81页 |
| ·类囊体膜蛋白提取 | 第81页 |
| ·膜蛋白超滤除盐 | 第81页 |
| ·膜蛋白定量 | 第81页 |
| ·膜蛋白的溶解与溶液内酶切 | 第81-82页 |
| ·溶液内蛋白酶解 | 第82页 |
| ·LCMS 蛋白鉴定和蛋白相对定量 | 第82-84页 |
| ·质谱数据处理 | 第84-85页 |
| ·虾青素合成不同阶段细胞固碳的测定 | 第85-87页 |
| ·结果 | 第87-97页 |
| ·强光照对雨生红球藻和盐藻类囊体膜结构的影响 | 第87-88页 |
| ·强光照逆境下，两种微藻细胞光合电子传递的变化 | 第88-89页 |
| ·强光下类囊体膜蛋白种类和含量的变化 | 第89-94页 |
| ·虾青素合成和积累过程中对碳源的固定和利用 | 第94-97页 |
| ·讨论 | 第97-106页 |
| ·雨生红球藻的类囊体膜在强光照下得到更好的保护 | 第97-98页 |
| ·雨生红球藻相对于盐藻更快的适应了强光逆境 | 第98-99页 |
| ·细胞色素 b6/f 复合体的下降可能有利于虾青素的合成 | 第99-100页 |
| ·雨生红球藻强光响应与盐藻相比特殊之处 | 第100-104页 |
| ·雨生红球藻虾青素合成以及对逆境响应全方位性 | 第104-106页 |
| 第四章 强光下不积累类胡萝卜素的大型海藻（浒苔）类囊体膜蛋白对强光的响应 | 第106-116页 |
| 引言 | 第106-107页 |
| ·材料与方法 | 第107-108页 |
| ·藻种和培养 | 第107页 |
| ·强光照处理和材料收集 | 第107页 |
| ·类囊体膜提取 | 第107页 |
| ·类囊体膜蛋白提取 | 第107页 |
| ·膜蛋白除盐 | 第107-108页 |
| ·蛋白定量、酶切和 LCMS 定性、定量分析 | 第108页 |
| ·质谱数据处理 | 第108页 |
| ·结果 | 第108-113页 |
| ·强光照不同阶段，LHCI 主要蛋白的变化 | 第108页 |
| ·强光照不同阶段，LHCII 主要蛋白的变化 | 第108-109页 |
| ·强光照不同阶段，细胞色素 b6/f 复合体主要蛋白的变化 | 第109页 |
| ·强光照不同阶段，PSI 主要蛋白的变化 | 第109-111页 |
| ·强光照不同阶段，PSII 主要蛋白的变化 | 第111-112页 |
| ·PSII-S 蛋白在强光照后的变化 | 第112-113页 |
| ·讨论 | 第113-116页 |
| ·两个捕光色素蛋白系统在强光下变化不一致 | 第113-114页 |
| ·PSI 和 PSII 反应中心蛋白分阶段变化 | 第114页 |
| ·PsbS 蛋白可能在浒苔中参与强光照响应 | 第114-116页 |
| 结论 | 第116-117页 |
| 参考文献 | 第117-140页 |
| 论文的后续研究工作 | 第140-141页 |
| 作者简历 | 第141-142页 |
| 已发表或完成的论文目录 | 第142页 |
