| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-8页 |
| 1 前言 | 第8-23页 |
| ·脑胶质瘤的概况 | 第8-10页 |
| ·脑胶质瘤的简介 | 第8页 |
| ·脑胶质瘤的特征 | 第8-9页 |
| ·脑胶质瘤的病因 | 第9页 |
| ·脑胶质瘤细胞 | 第9页 |
| ·脑胶质瘤的危害 | 第9-10页 |
| ·MRTF-A及其与脑胶质瘤的关系 | 第10-16页 |
| ·MRTF-A和MRTFs简介 | 第10-11页 |
| ·MRTF-A的表达模式 | 第11页 |
| ·MRTF-A的结构特点 | 第11-14页 |
| ·MRTF-A与肿瘤等疾病的关系 | 第14-15页 |
| ·MRTF-A与脑胶质瘤细胞分化的关系 | 第15-16页 |
| ·Egr-1 | 第16-19页 |
| ·Egr-1概况 | 第16页 |
| ·Egr-1的表达 | 第16页 |
| ·Egr-1基因定位 | 第16-17页 |
| ·Egr-1的特点 | 第17页 |
| ·Egr-1与其信号通路 | 第17页 |
| ·Egr-1与细胞分化的关系 | 第17-19页 |
| ·Egr-1与脑胶质瘤细胞分化的关系 | 第19页 |
| ·ATRA与脑胶质瘤细胞分化的关系 | 第19-20页 |
| ·本论文的研究意义及主要研究内容 | 第20-23页 |
| ·研究目的及意义 | 第20-21页 |
| ·研究的主要内容 | 第21-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-45页 |
| ·实验材料 | 第23-28页 |
| ·实验动物、质粒和细胞 | 第23页 |
| ·实验试剂 | 第23-25页 |
| ·实验仪器 | 第25-26页 |
| ·主要溶液的配置 | 第26-28页 |
| ·实验方法 | 第28-45页 |
| ·SD新生大鼠脑神经胶质细胞的分离培养与纯化 | 第28-29页 |
| ·C6细胞的复苏与培养 | 第29-31页 |
| ·逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第31-35页 |
| ·质粒的大提制备 | 第35-36页 |
| ·细胞转染 | 第36-37页 |
| ·荧光素酶(luciferase)活性检测 | 第37-39页 |
| ·免疫细胞化学 | 第39-40页 |
| ·细胞蛋白的提取 | 第40-41页 |
| ·Western blot(蛋白质免疫印迹) | 第41-43页 |
| ·MTT方法 | 第43-44页 |
| ·统计分析方法 | 第44-45页 |
| 3 结果与讨论 | 第45-64页 |
| ·新生SD大鼠脑神经胶质细胞的分离纯化 | 第45-47页 |
| ·复苏与培养C6细胞 | 第47-49页 |
| ·C6与R-PG中GFAP、Ki67、MRTF-A和Egr-1的表达情况 | 第49-53页 |
| ·MRTF-A激活Egr-1启动子转录活性的研究 | 第53-57页 |
| ·MRTF-A诱导C6分化 | 第57-61页 |
| ·MRTF-A对C6细胞的形态学影响 | 第57-58页 |
| ·免疫化学方法验证MRTF-A可上调GFAP蛋白的表达 | 第58-59页 |
| ·MRTF-A促进GFAP的mRNA水平、降低Ki67的mRNA水平 | 第59-60页 |
| ·MRTF-A升高GFAP的蛋白水平、降低Ki67的蛋白水平 | 第60-61页 |
| ·MRTF-A激活Egr-1诱导脑胶质瘤细胞分化的研究 | 第61-62页 |
| ·在MRTF-A诱导脑胶质瘤细胞分化过程中Egr-1mRNA水平升高 | 第61页 |
| ·在MRTF-A诱导脑胶质瘤细胞分化过程中Egr-1蛋白水平升高 | 第61-62页 |
| ·MRTF-A对分化的脑胶质瘤细胞存活的影响 | 第62-64页 |
| 4 结论 | 第64-65页 |
| 5 展望 | 第65-66页 |
| 6 参考文献 | 第66-74页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第74-75页 |
| 8 致谢 | 第75页 |
