摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-7页 |
目录 | 第7-10页 |
1.引言 | 第10-16页 |
·橡胶生物合成与乙烯利刺激增产 | 第10-13页 |
·橡胶生物合成和产排胶生理 | 第10-12页 |
·橡胶生物合成 | 第10-11页 |
·胶乳生理参数及其与产排胶的关系 | 第11-12页 |
·乙烯利刺激增产技术 | 第12页 |
·乙烯利刺激产胶机理 | 第12页 |
·乙烯利刺激排胶机理 | 第12-13页 |
·乙烯利刺激增产的副作用 | 第13页 |
·植物水通道蛋白研究进展 | 第13-16页 |
·植物水通道蛋白的的发现和研究概况 | 第13-14页 |
·植物水通道蛋白的分类和结构特点 | 第14页 |
·植物水通道蛋白的功能 | 第14-15页 |
·乙烯对植物水通道蛋白表达的影响 | 第15页 |
·橡胶树水通道蛋白研究进展 | 第15-16页 |
·本研究的意义 | 第16页 |
2 材料与方法 | 第16-25页 |
·材料与试剂 | 第16-18页 |
·样品采集 | 第16-17页 |
·主要实验材料与试剂 | 第17页 |
·主要仪器 | 第17-18页 |
·方法与步骤 | 第18-25页 |
·胶乳总RNA的提取、纯化及检测 | 第18-20页 |
·胶乳总RNA的提取 | 第18页 |
·树皮及不同组织总RNA的提取 | 第18-19页 |
·RNA的纯化 | 第19页 |
·RNA的电泳检测 | 第19-20页 |
·逆转录 | 第20页 |
·爪蟾卵母细胞的分离 | 第20页 |
·体外转录及加帽合成cRNA | 第20页 |
·水导度(Pf)的测定 | 第20-21页 |
·HgCl_2对橡胶树水通道蛋白活性的抑制实验 | 第21页 |
·RT-PCR分析 | 第21页 |
·引物设计方法 | 第21页 |
·反应体系和条件 | 第21页 |
·标准曲线的制作 | 第21页 |
·Western-blot分析 | 第21-23页 |
·胶乳总蛋白的提取 | 第21页 |
·胶乳蛋白浓度的测定 | 第21-22页 |
·SDS-PAGE电泳 | 第22页 |
·转膜、抗体孵育、显色和拍照 | 第22-23页 |
·胶乳生理参数的测定 | 第23-25页 |
3 结果与分析 | 第25-43页 |
·胶乳总RNA提取 | 第25-26页 |
·HBPIP1和HBPIP2在爪蟾卵母细胞中的功能鉴定 | 第26-27页 |
·RT-PCR结果分析 | 第27-33页 |
·YLS8扩增曲线、融解曲线和标准曲线 | 第27-28页 |
·HbPIP1的扩增曲线、融解曲线和标准曲线 | 第28-29页 |
·HbPIP2的扩增曲线、融解曲线和标准曲线 | 第29-30页 |
·HbPIP1和HbPIP2在不同组织中的表达分析 | 第30-31页 |
·不同时间乙烯利刺激胶乳HbPIP1和HbPIP2表达量变化 | 第31页 |
·乙烯利刺激后不同时间树皮HbPIP1和HbPIP2的表达量变化 | 第31-32页 |
·割胶后不同时间段排出的胶乳HbPIP1和HbPIP2的表达量变化 | 第32-33页 |
·WESTERN BLOT结果分析 | 第33-37页 |
·翻译水平上乙烯利刺激后不同时间割胶胶乳HbPIP1表达差异 | 第33-35页 |
·翻译水平上割胶后不同时间段排的胶乳HbPIP1表达差异 | 第35-36页 |
·翻译水平上乙烯利刺激后不同时间树皮HbPIP1表达差异 | 第36-37页 |
·胶乳生理参数结果分析 | 第37-43页 |
·排胶体积 | 第37-38页 |
·排胶时间 | 第38-39页 |
·干含 | 第39页 |
·总固形物 | 第39-40页 |
·蔗糖 | 第40页 |
·无机磷 | 第40-41页 |
·硫醇 | 第41-42页 |
·黄色体破裂指数 | 第42页 |
·pH值 | 第42-43页 |
4 讨论 | 第43-46页 |
·关于功能鉴定 | 第43-44页 |
·胶乳生理参数与水通道蛋白的表达 | 第44-46页 |
5 结论 | 第46-48页 |
·橡胶树水通道蛋白的功能 | 第46页 |
·橡胶树水通道蛋白转录水平表达 | 第46-47页 |
·橡胶树水通道蛋白HBPIP1翻译水平表达 | 第47页 |
·乙烯利刺激后不同时间割胶胶乳生理参数变化与橡胶树水通道蛋白表达密切 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-54页 |
附录 | 第54-58页 |
附录一:有关试剂的配制 | 第54-57页 |
附录二:缩略词 | 第57-58页 |
致谢 | 第58页 |