| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 中英文缩略词对照 | 第10-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-15页 |
| 参考文献 | 第13-15页 |
| 第2章 材料与仪器 | 第15-20页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·实验试剂 | 第15-18页 |
| ·主要购置试剂 | 第15-16页 |
| ·主要配置试剂 | 第16-18页 |
| ·实验仪器 | 第18-20页 |
| 第3章 实验方法 | 第20-28页 |
| ·实验分组 | 第20页 |
| ·二次 SAH 后 CVS 模型的建立 | 第20页 |
| ·墨汁染色法鉴定二次 SAH 后 CVS 模型 | 第20-21页 |
| ·HE 染色观察正常组与 SAH 组基底动脉形态变化 | 第21-22页 |
| ·免疫组化染色检测正常组与 SAH 组中 OPN、TNC 和 E-selectin 的表达与分布情况 | 第22-24页 |
| ·对照设置 | 第23页 |
| ·免疫组化阳性表达的判定标准 | 第23-24页 |
| ·Western Blotting 技术检测正常组与 SAH 组中 OPN、TNC、E-selectin 的表达情况 | 第24-27页 |
| ·总蛋白样品制备 | 第24页 |
| ·样品蛋白含量的测定 | 第24-25页 |
| ·配制 5%积层胶及 12%分离胶 | 第25页 |
| ·灌胶上样 | 第25页 |
| ·垂直电泳 | 第25-26页 |
| ·转膜 | 第26页 |
| ·OPN 蛋白免疫反应 | 第26页 |
| ·目标蛋白化学发光及曝光（夜间暗室中操作） | 第26-27页 |
| ·膜再生 | 第27页 |
| ·E-selectin 和 TNC 蛋白免疫反应及化学发光 | 第27页 |
| ·内参蛋白检测 | 第27页 |
| ·图像分析 | 第27页 |
| ·数据统计分 | 第27-28页 |
| 第4章 实验结果 | 第28-34页 |
| ·动物体内 SAH 模型的建立 | 第28页 |
| ·墨汁染色后测量基底动脉直径变化 | 第28-29页 |
| ·免疫组化中 OPN、TNC 及 E-selectin 在各组织中表达分布情况： | 第29-30页 |
| ·Western bloting 检测 OPN、TNC 及 E-selectin 在各组织中表达分布情况 | 第30-34页 |
| 第5章 讨论 | 第34-41页 |
| ·蛛网膜下腔出血（SAH）后脑血管痉挛（CVS）的现状 | 第34-35页 |
| ·SAH 后 CVS 的可能机制 | 第35-36页 |
| ·目前 CVS 的相关治疗方法 | 第36-37页 |
| ·缝隙连接（GJ） | 第37-38页 |
| ·Cx43 在 CVS 中的作用 | 第38页 |
| ·前期研究中存在的问题 | 第38-39页 |
| ·靶向沉默 Cx43 治疗 CVS | 第39页 |
| ·靶向识别蛋白的选择 | 第39-40页 |
| ·可能存在的问题 | 第40-41页 |
| 第6章 结论 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 附图 | 第46-55页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第55-56页 |
| 综述 | 第56-68页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
