果糖酯的酶法合成及超声强化
摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-30页 |
1.1 概述 | 第11-12页 |
1.2 生物催化剂酶的性质 | 第12-15页 |
1.2.1 酶的简介 | 第12-13页 |
1.2.2 固定化酶 | 第13页 |
1.2.3 脂肪酶 | 第13-15页 |
1.3 非水介质中的酶催化 | 第15-18页 |
1.3.1 非水介质中酶催化的必需水和最佳加水量 | 第15-16页 |
1.3.2 有机介质中酶的催化活性 | 第16-18页 |
1.4 糖酯合成方法及影响因素 | 第18-22页 |
1.4.1 合成方法 | 第18-19页 |
1.4.2 酶催化反应的影响因素 | 第19-22页 |
1.5 糖酯合成在其它方面的应用 | 第22-23页 |
1.5.1 提供有机合成的前体 | 第22页 |
1.5.2 对有药理活性的分子进行修饰 | 第22-23页 |
1.5.3 合成某些具有药理活性的物质 | 第23页 |
1.5.4 合成高分子材料 | 第23页 |
1.6 超声理论 | 第23-27页 |
1.6.1 超声及声化学简介 | 第23-24页 |
1.6.2 超声作用机制 | 第24页 |
1.6.3 超声空化效应 | 第24-26页 |
1.6.4 描述超声波的基本声学参数 | 第26-27页 |
1.7 超声对酶反应的影响 | 第27-29页 |
1.7.1 超声在生物工程中的应用 | 第27-28页 |
1.7.2 超声对于酶催化反应的影响 | 第28-29页 |
1.8 本课题的研究内容 | 第29-30页 |
第二章 酶法合成糖酯工艺条件的选择 | 第30-50页 |
2.1 引言 | 第30-31页 |
2.2 材料 | 第31-33页 |
2.2.1 实验试剂 | 第31-32页 |
2.2.2 实验仪器及设备 | 第32-33页 |
2.3 方法 | 第33-39页 |
2.3.1 实验方法 | 第33-36页 |
2.3.2 分析方法 | 第36-39页 |
2.4 结果讨论 | 第39-44页 |
2.4.1 溶剂的选择 | 第39页 |
2.4.2 反应体系中水含量的影响 | 第39-43页 |
2.4.3 分子筛用量对反应平衡的影响 | 第43-44页 |
2.5 合成条件优化 | 第44-49页 |
2.5.1 酰基受体的选择 | 第44-45页 |
2.5.2 酰基供体的选择 | 第45-46页 |
2.5.3 底物比例的选择 | 第46-47页 |
2.5.4 酶的稳定性 | 第47-49页 |
2.5.5 最佳的合成条件 | 第49页 |
2.6 本章小结 | 第49-50页 |
第三章 酶法合成糖酯的超声强化 | 第50-62页 |
3.1 引言 | 第50-51页 |
3.2 实验装置 | 第51页 |
3.3 实验方法 | 第51-52页 |
3.3.1 酶法合成糖酯的超声强化实验 | 第51页 |
3.3.2 酶的分离与回收 | 第51-52页 |
3.3.3 酶的活性测定 | 第52页 |
3.3.4 转化率的测定 | 第52页 |
3.4 分析方法 | 第52-53页 |
3.5 实验结果及讨论 | 第53-60页 |
3.5.1 反应物及产物的标准曲线 | 第53页 |
3.5.2 超声对反应约影响 | 第53-59页 |
3.5.3 超声对于酶活的影响 | 第59-60页 |
3.6 声化学反应器中酶反应的研究状况 | 第60-62页 |
第四章 结论与展望 | 第62-65页 |
4.1结论 | 第62-63页 |
4.1.1 拟固态体系溶剂的选择和水含量控制 | 第62页 |
4.1.2 反应条件的优化 | 第62-63页 |
4.1.3 反应的超声强化 | 第63页 |
4.2 展望 | 第63-65页 |
参考文献 | 第65-73页 |
成果 | 第73-74页 |
致谢 | 第74页 |