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一步纯化固定化γ-内酰胺酶及柱上拆分(±)γ-内酰胺研究

摘要第1-5页
ABSTRACT第5-9页
第一章 绪论第9-21页
   ·手性化合物与手性药物第9-11页
   ·(-)γ-内酰胺及其应用第11-12页
   ·手性化合物的制备第12-17页
     ·外消旋体拆分法第13-15页
     ·不对称合成法第15-16页
     ·生物法手性拆分特点第16-17页
   ·固定化酶技术第17-18页
   ·本课题研究内容及意义第18-21页
第二章 内酰胺酶的固定化及酶学性质研究第21-35页
   ·引言第21页
   ·材料与方法第21-27页
     ·主要试剂及药品第21页
     ·主要仪器第21-22页
     ·质粒及菌种第22页
     ·培养基第22页
     ·溶剂配制第22-23页
     ·蛋白的表达与纯化第23-24页
     ·SDS-PAGE电泳第24页
     ·BCA法测蛋白浓度第24-25页
     ·手性HPLC分析产品第25页
     ·酶的固定化第25页
     ·固定化酶与游离酶米氏常数Km值以及Vmax第25-26页
     ·固定化酶与游离酶的最适温度测定第26页
     ·固定化酶与游离酶的最适PH测定第26页
     ·固定化酶与游离酶的PH耐受性测定第26页
     ·固定化酶与游离酶在80℃的热耐受性测定第26-27页
   ·结果与讨论第27-33页
     ·BCA法测蛋白浓度第27页
     ·γ-内酰胺酶的表达与纯化第27-28页
     ·固定化酶的制备第28页
     ·固定化酶活性的测定第28-29页
     ·固定化酶与游离酶Km第29-30页
     ·固定化酶与游离酶最适温度第30-31页
     ·固定化酶与游离酶最适P H第31-32页
     ·固定化酶与游离酶pH耐受性第32-33页
     ·温度耐受性第33页
   ·本章小结第33-35页
第三章 固定化酶柱上拆分(±)γ-内酰胺第35-49页
   ·引言第35页
   ·材料与方法第35-40页
     ·主要试剂及药品第35-36页
     ·主要仪器第36页
     ·质粒及菌种第36页
     ·培养基第36页
     ·溶剂配制第36-37页
     ·蛋白的表达与纯化第37-38页
     ·SDS-PAGE电泳第38-39页
     ·BCA法测蛋白浓度第39页
     ·手性HPLC分析产品第39页
     ·一步纯化固定化重组γ-内酰胺水解酶于Ni-螯合柱第39页
     ·柱上拆分(±)γ-内酰胺制备(-)γ-内酰胺第39-40页
     ·固定化酶柱的重复使用第40页
   ·结果与讨论第40-46页
     ·柱上固定化酶第40-44页
     ·固定化酶柱稳定性第44-46页
   ·本章小结第46-49页
第四章 乳糖诱导工程菌发酵产γ-内酰胺水解酶及中试放大第49-61页
   ·引言第49页
   ·材料与方法第49-53页
     ·主要试剂及药品第49页
     ·主要仪器第49-50页
     ·培养基第50页
     ·质粒及菌种第50页
     ·湿菌体制备第50-51页
     ·生物量(Biomass)的测定第51页
     ·溶剂配制第51页
     ·SDS-PAGE电泳第51-52页
     ·手性HPLC分析产品第52页
     ·乳糖与IPTG诱导的蛋白表达第52-53页
     ·乳糖诱导的发酵中试放大第53页
   ·结论与讨论第53-58页
     ·乳糖与IPTG诱导蛋白表达量的比较第53页
     ·乳糖诱导不同时间蛋白表达量第53-54页
     ·不同乳糖浓度诱导蛋白表达量第54-55页
     ·在培养基中直接加入乳糖蛋白表达第55-56页
     ·放大试验第56-58页
   ·本章小结第58-61页
第五章 结论第61-63页
参考文献第63-69页
附录第69-75页
致谢第75-77页
研究成果及发表的学术论文第77-79页
作者及导师简介第79-80页
北京化工大学硕士研究生学位论文答辩委员会决议书第80-81页

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