| 中文摘要 | 第1-3页 |
| ABSTRACT | 第3-8页 |
| 前言 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-19页 |
| ·有关糖尿病的一些研究进展 | 第9-10页 |
| ·糖尿病的发病机制 | 第9页 |
| ·糖尿病的严重程度 | 第9-10页 |
| ·治疗糖尿病药物的研究进展 | 第10页 |
| ·山药概述 | 第10-11页 |
| ·山药多糖的药理作用研究 | 第11页 |
| ·山药多糖的化学研究进展 | 第11页 |
| ·玉米须的研究进展 | 第11-13页 |
| ·玉米须的化学成分及药理作用 | 第11-12页 |
| ·玉米须多糖的结构及药理作用 | 第12页 |
| ·玉米须黄酮的结构及药理作用 | 第12页 |
| ·玉米须皂苷的研究现状 | 第12-13页 |
| ·皂苷结构解析 | 第13-15页 |
| ·电喷雾（ESI）和串联质谱在皂苷结构解析中的应用 | 第13-14页 |
| ·核磁共振（NMR）新技术在皂苷结构解析中的应用 | 第14-15页 |
| ·实验原理简介 | 第15-17页 |
| ·纤维素酶辅助提取 | 第15-16页 |
| ·α-淀粉酶 | 第16页 |
| ·超声辅助提取 | 第16-17页 |
| ·高速逆流色谱 | 第17页 |
| ·目标成分的检测方法 | 第17-19页 |
| ·多糖含量的检测 | 第17页 |
| ·黄酮含量的测定 | 第17-19页 |
| 第二章 山药多糖提取工艺研究 | 第19-31页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第19-20页 |
| ·α-淀粉酶相关性质的检测 | 第19页 |
| ·实验原料 | 第19页 |
| ·实验仪器 | 第19页 |
| ·实验试剂 | 第19-20页 |
| ·实验方法 | 第20页 |
| ·超声提取法 | 第20页 |
| ·α-淀粉酶降解条件的优化 | 第20页 |
| ·联合提取 | 第20页 |
| ·测定方法 | 第20-21页 |
| ·标准曲线的制备 | 第20-21页 |
| ·样品的测定 | 第21页 |
| ·实验结果及讨论 | 第21-29页 |
| ·超声提取条件的优化 | 第21-25页 |
| ·α-淀粉酶酶降解条件的优化 | 第25-28页 |
| ·酶-超声联合提取 | 第28-29页 |
| ·本章小结 | 第29-31页 |
| ·超声辅助提取 | 第29页 |
| ·α-淀粉酶的使用 | 第29-31页 |
| 第三章 玉米须多糖提取工艺研究 | 第31-42页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第31-32页 |
| ·实验原料 | 第31页 |
| ·实验仪器 | 第31页 |
| ·实验药品 | 第31页 |
| ·纤维素酶悬浮液的配制 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32页 |
| ·纤维素酶活力的检测 | 第32页 |
| ·酶解条件的优化 | 第32页 |
| ·超声波辅助提取玉米须多糖 | 第32页 |
| ·联合提取 | 第32页 |
| ·测定方法 | 第32-33页 |
| ·标准曲线的制备 | 第32页 |
| ·样品的测定 | 第32-33页 |
| ·实验结果及讨论 | 第33-41页 |
| ·纤维素降酶解条件的优化 | 第33-37页 |
| ·玉米须多糖的超声提取 | 第37-40页 |
| ·酶解-超声联合提取 | 第40-41页 |
| ·本章小结 | 第41-42页 |
| 第四章 玉米须黄酮提取工艺研究 | 第42-54页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第42-43页 |
| ·实验原料 | 第42页 |
| ·实验仪器 | 第42页 |
| ·实验试剂 | 第42页 |
| ·实验所需溶液的配制 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43页 |
| ·酶解条件的优化 | 第43页 |
| ·超声提取条件的优化 | 第43页 |
| ·酶解—超声联合提取方案的确定 | 第43页 |
| ·乙醇回流提取 | 第43页 |
| ·检测方法 | 第43-44页 |
| ·标准曲线的制定 | 第43-44页 |
| ·样品测定 | 第44页 |
| ·实验结果与讨论 | 第44-53页 |
| ·酶解条件的优化 | 第44-48页 |
| ·超声提取条件的优化 | 第48-52页 |
| ·联合提取方案 | 第52页 |
| ·乙醇回流提取 | 第52-53页 |
| ·本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 玉米须皂苷的提取分离及结构鉴定 | 第54-70页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第54-55页 |
| ·实验原料 | 第54页 |
| ·实验仪器 | 第54页 |
| ·实验试剂 | 第54-55页 |
| ·检测试剂配制 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-59页 |
| ·玉米须粗皂苷的提取分离 | 第55-56页 |
| ·粗皂苷的定性检识 | 第56页 |
| ·逆流色谱溶剂系统的选择 | 第56页 |
| ·逆流色谱仪器参数的优化 | 第56-57页 |
| ·玉米须皂苷的分离 | 第57页 |
| ·逆流色谱固定相保留率的测定 | 第57页 |
| ·样品HPLC检测 | 第57-58页 |
| ·样品的紫外可见光谱分析 | 第58页 |
| ·样品的红外分析 | 第58页 |
| ·样品质谱分析 | 第58页 |
| ·样品核磁共振波谱分析 | 第58-59页 |
| ·实验结果及分析 | 第59-69页 |
| ·粗皂苷的提取分离 | 第59页 |
| ·粗皂苷的检识 | 第59页 |
| ·溶剂系统的选择 | 第59-60页 |
| ·玉米须皂苷的分离及固定相保留率的测定 | 第60-62页 |
| ·样品的HPLC检测 | 第62页 |
| ·样品UV光谱解析 | 第62-63页 |
| ·IR谱图解析 | 第63-64页 |
| ·ESI分析 | 第64-65页 |
| ·EI分析 | 第65-66页 |
| ·~1HNMR解析 | 第66-69页 |
| ·本章小结 | 第69-70页 |
| 第六章 结论 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 发表论文和科研情况说明 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |