| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-30页 |
| ·葛根素 | 第9-16页 |
| ·葛根素概述 | 第9页 |
| ·葛根素在心血管方面的药理学研究 | 第9-11页 |
| ·葛根素对细胞凋亡的影响研究 | 第11-16页 |
| ·一氧化氮及其心血管方面药理作用 | 第16-18页 |
| ·一氧化氮及一氧化氮合酶 | 第16-17页 |
| ·一氧化氮在心血管方面的药理作用 | 第17-18页 |
| ·细胞凋亡及相关机理 | 第18-30页 |
| ·细胞凋亡概述 | 第18-19页 |
| ·细胞凋亡的形态特征 | 第19-20页 |
| ·细胞凋亡的生化特征 | 第20-21页 |
| ·细胞凋亡的信号传导途径 | 第21-24页 |
| ·细胞凋亡的中枢效应器——Caspase蛋白酶家族 | 第24-28页 |
| ·Bcl-2基因 | 第28-30页 |
| 第二章 H_9C_2细胞及其培养 | 第30-33页 |
| ·H_9C_2细胞概述 | 第30页 |
| ·有关H_9C_2细胞培养 | 第30-33页 |
| ·仪器及试剂 | 第30-31页 |
| ·细胞培养步骤 | 第31-33页 |
| 第三章 葛根素对心肌细胞一氧化氮产生的影响研究 | 第33-50页 |
| ·实验目的及实验设计 | 第33页 |
| ·实验目的 | 第33页 |
| ·实验设计 | 第33页 |
| ·Westernblotting法对eNOS蛋白表达检测 | 第33-39页 |
| ·仪器及试剂 | 第33-35页 |
| ·实验步骤 | 第35-39页 |
| ·RT-PCR法对eNOS mRNA基因表达检测 | 第39-43页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第39-40页 |
| ·实验步骤 | 第40-43页 |
| ·NO含量测定 | 第43-44页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第43-44页 |
| ·NO含量检测操作步骤 | 第44页 |
| ·实验结果 | 第44-48页 |
| ·westernblot结果 | 第44-45页 |
| ·RT-PCR结果 | 第45-48页 |
| ·一氧化氮含量检测结果 | 第48页 |
| ·讨论 | 第48-49页 |
| ·小结 | 第49-50页 |
| 第四章 葛根素对H_2O_2诱导心肌细胞凋亡的影响研究 | 第50-71页 |
| ·实验目的及实验设计 | 第50页 |
| ·实验目的 | 第50页 |
| ·实验设计 | 第50页 |
| ·MTT法测细胞存活率,寻找最适H_2O_2浓度 | 第50-51页 |
| ·细胞模型与分组 | 第51页 |
| ·SOD,MDA及GSH-PX检测 | 第51-53页 |
| ·超氧化物酶(SOD)活力测定 | 第51-52页 |
| ·谷胱甘肽过氧化物酶(GSH—PX)活力测定 | 第52页 |
| ·丙二醛(MDA)活力测定 | 第52-53页 |
| ·Hoechst33258染色 | 第53页 |
| ·Westernblotting | 第53-54页 |
| ·试剂： | 第53-54页 |
| ·实验方法 | 第54页 |
| ·RT-PCR | 第54-55页 |
| ·试剂 | 第54-55页 |
| ·方法及试剂 | 第55页 |
| ·Caspase—3活性测定 | 第55页 |
| ·实验结果 | 第55-67页 |
| ·H_2O_2对细胞活性抑制及葛根素的影响作用 | 第55-56页 |
| ·葛根素对H_2O_2影响的各种氧化指标的作用 | 第56-59页 |
| ·葛根素对H_2O_2影响的细胞核变化 | 第59-60页 |
| ·葛根素对H_2O_2影响Bcl-2,Bax及Cytc蛋白表达的影响 | 第60-64页 |
| ·葛根素对H_2O_2影响Bcl-2,Bax基因表达的影响 | 第64-66页 |
| ·葛根素对H_2O_2影响caspase-3活性提高的抑制作用 | 第66-67页 |
| ·讨论 | 第67-69页 |
| ·小结 | 第69-71页 |
| 参考文献： | 第71-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 论文情况 | 第81-82页 |
| 附件 | 第82-101页 |
