| 致谢 | 第1-6页 |
| 本论文研究的创新点 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一部分 文献综述 | 第9-18页 |
| 糖尿病引发相关组织细胞异常凋亡和病变 | 第9-18页 |
| 第二部分 实验研究报告 | 第18-53页 |
| 第一章 设计思路和实验方案 | 第18-20页 |
| 1 实验目的、意义 | 第18-19页 |
| 2 实验方案 | 第19页 |
| 3 技术路线 | 第19-20页 |
| 第二章 2型糖尿病大鼠模型的建立 | 第20-28页 |
| 1 实验材料、试剂、设备 | 第20页 |
| ·材料 | 第20页 |
| ·试剂及试剂盒 | 第20页 |
| ·仪器、用品 | 第20页 |
| 2 实验方法 | 第20-23页 |
| ·小剂量STZ注射诱导糖尿病 | 第20-21页 |
| ·血标本采集 | 第21页 |
| ·血浆胰岛素(INS)放射性免疫分析法 | 第21-22页 |
| ·载脂蛋白AI和B免疫比浊法 | 第22页 |
| ·瘦素(Leptin)放射性免疫分析法 | 第22-23页 |
| ·2型糖尿病判断标准 | 第23页 |
| ·数据处理方法 | 第23页 |
| 3 实验结果 | 第23-25页 |
| ·对照组和实验组大鼠One Touch Ⅱ血糖仪尾尖采血结果及体重变化 | 第23-24页 |
| ·在高糖高脂饮食基础上小剂量STZ注射对2型糖尿病大鼠模型代谢及生化的影响 | 第24页 |
| ·在高糖高脂饮食基础上小剂量STZ注射对2型糖尿病大鼠模型胰岛素(INS)浓度的影响 | 第24页 |
| ·在高糖高脂饮食基础上小剂量STZ注射对2型糖尿病大鼠模型载脂蛋白AI和B含量的影响 | 第24-25页 |
| ·在高糖高脂饮食基础上小剂量STZ注射后对2型糖尿病大鼠模型瘦素(Leptin)的影响 | 第25页 |
| 4 实验分析 | 第25-27页 |
| 5 结论 | 第27-28页 |
| 第三章 应用基因芯片研究2型糖尿病大鼠表达谱的变化 | 第28-46页 |
| 1 实验材料、试剂、设备 | 第28页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·试剂及试剂盒 | 第28页 |
| ·仪器、用品 | 第28页 |
| 2 实验方法 | 第28-33页 |
| ·肾脏组织的分离、提取 | 第28页 |
| ·组织总RNA的提取 | 第28-29页 |
| ·基因芯片制备 | 第29-30页 |
| ·探针制备、标记与杂交 | 第30-32页 |
| ·检测和分析 | 第32-33页 |
| ·质量监控 | 第33页 |
| ·生物信息学分析 | 第33页 |
| 3 实验结果 | 第33-39页 |
| ·实验组和对照组肾组织的总RNA的浓度和纯度测定 | 第33-34页 |
| ·实验组和对照组肾组织总RNA的电泳结果 | 第34页 |
| ·检测和分析 | 第34-39页 |
| 4 实验分析 | 第39-44页 |
| 5 结论 | 第44-46页 |
| 第四章 应用TUNEL检测2型糖尿病大鼠肾脏细胞的凋亡 | 第46-53页 |
| 1 实验材料、试剂、设备 | 第46页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·试剂及试剂盒 | 第46页 |
| ·仪器、用品 | 第46页 |
| 2 实验方法 | 第46-48页 |
| ·肾组织切片过程 | 第46-47页 |
| ·TUNEL检测方法 | 第47页 |
| ·肾组织切片凋亡照片用Optimas 6.5软件进行分析 | 第47-48页 |
| ·数据采用SAS统计软件进行统计分析 | 第48页 |
| 3 实验结果 | 第48-51页 |
| ·肾组织冷冻切片的TUNEL检测结果 | 第48-51页 |
| ·Optimas 6.5软件检测细胞凋亡，并用SAS软件进行统计分析结果 | 第51页 |
| 4 实验分析 | 第51-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 在读期间发表的文章 | 第59页 |
