| 缩略词一览表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-13页 |
| 英文摘要 | 第13-19页 |
| 前言 | 第19-27页 |
| 参考文献 | 第23-27页 |
| 第一部分 紫杉醇和喜树碱及其衍生物的抗侵袭转移机理研究 | 第27-130页 |
| 一.紫杉醇与喜树碱对瘤细胞粘附、侵袭、运动以及分泌基质金属蛋白酶能力的影响 | 第27-44页 |
| 前言 | 第27页 |
| 材料和方法 | 第27-30页 |
| 实验结果 | 第30-36页 |
| 1.紫杉醇与喜树碱对瘤细胞粘附的抑制作用 | 第30-32页 |
| ·对B16BL6细胞与Fibronectin粘附的抑制作用 | 第30页 |
| ·对B16BL6细胞与Laminin粘附的抑制作用 | 第30-31页 |
| ·对B16F10细胞与Fibronectin粘附的抑制作用 | 第31页 |
| ·对B16F10细胞与Laminin粘附的抑制作用 | 第31-32页 |
| 2.紫杉醇与喜树碱对B16BL6细胞侵袭能力的影响 | 第32-33页 |
| ·-D胶原小室法检测药物对B16F10细胞运动能力的影响 | 第33-34页 |
| 4.紫杉醇与喜树碱对HT1080细胞分泌基质金属蛋白酶能力的影响 | 第34-36页 |
| 讨论 | 第36-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 二.紫杉醇与喜树碱的抑制血管生成研究 | 第44-61页 |
| 前言 | 第44页 |
| 材料和方法 | 第44-47页 |
| 实验结果 | 第47-55页 |
| 1.鸡胚尿囊法检测药物的血管生成抑制作用 | 第47页 |
| 2.对HUVEC细胞增殖的抑制实验 | 第47页 |
| 3.诱导HUVEC及ECV304细胞凋亡的研究 | 第47-51页 |
| ·流式细胞测定法检测HUVEC细胞的凋亡 | 第47-48页 |
| ·流式细胞测定法检测ECV304细胞的凋亡 | 第48-49页 |
| ·光学显微镜检测ECV304细胞形态变化 | 第49-50页 |
| ·荧光显微镜检测ECV304细胞形态变化 | 第50页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳法检测ECV304细胞凋亡 | 第50-51页 |
| 4.对HUVEC分泌基质金属蛋白酶的抑制作用 | 第51-52页 |
| 5.对ECV-304以及HUVEC管腔形成的抑制作用 | 第52-54页 |
| 6.Western印迹法检测药物对ECV304细胞VEGF表达的影响 | 第54-55页 |
| 讨论 | 第55-59页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
| 三.紫杉醇与喜树碱对免疫功能的影响 | 第61-75页 |
| 前言 | 第61页 |
| 材料和方法 | 第61-63页 |
| 实验结果 | 第63-67页 |
| 1.对巨噬细胞功能的影响 | 第63-65页 |
| ·ELISA法检测药物对巨噬细胞分泌TNF-α的影响 | 第63页 |
| ·对巨噬细胞产生NO的影响 | 第63-64页 |
| ·对巨噬细胞分泌酸性磷酸酶的影响 | 第64页 |
| ·对巨噬细胞过氧化物酶分泌的影响 | 第64-65页 |
| 2 单细胞凝胶电泳法检测药物对胸腺淋巴细胞的作用 | 第65-67页 |
| 讨论 | 第67-72页 |
| 参考文献 | 第72-75页 |
| 四.紫杉醇与喜树碱抗转移的分子机理探讨 | 第75-109页 |
| 前言 | 第75页 |
| 材料和方法 | 第75-79页 |
| 实验结果 | 第79-97页 |
| 1.激光共聚焦显微镜法检测药物对M14、MCF-7细胞表面Integrin-αM表达的影响 | 第79页 |
| 2.荧光显微镜观察药物对MV3、MDAMB435细胞表面Integrin-αM表达的影响 | 第79-85页 |
| 3.流式细胞仪检测药物对MCF-7细胞P53及Nm23蛋白表达的影响 | 第85-86页 |
| 4.Western blot法检测药物对MV3细胞P53蛋白表达的影响 | 第86-87页 |
| 5.Western blot法检测药物对M14细胞iNOS蛋白表达的影响 | 第87-88页 |
| 6.RT-PCR法检测药物对细胞MMP2及VEGF mRNA含量的影响 | 第88-93页 |
| ·RT-PCR法检测药物对MV3细胞MMP2及VEGF mRNA含量的影响 | 第88-90页 |
| ·RT-PCR法检测药物对MDAMB435细胞MMP2及VEGF mRNA含量的影响 | 第90-93页 |
| 7.Western blot法检测MCF-7分泌TIMP-1蛋白的影响 | 第93-94页 |
| 8.药物对B16BL6、B16F10、MCF-7、MDAMB435以及MV3细胞集落形成的影响 | 第94-97页 |
| ·药物对B16BL6及B16F10细胞集落形成的影响 | 第94页 |
| ·药物对MCF-7及MDAMB435细胞集落形成的影响 | 第94-96页 |
| ·药物对MV3细胞集落形成的影响 | 第96-97页 |
| 讨论 | 第97-102页 |
| 参考文献 | 第102-109页 |
| 五.体内小鼠黑色素瘤自发转移模型检测药物的抗转移机理 | 第109-130页 |
| 前言 | 第109页 |
| 材料和方法 | 第109-112页 |
| 实验结果 | 第112-123页 |
| 1.小鼠黑色素瘤自发性肺转移 | 第112页 |
| 2.HE染色法观察药物对黑色素瘤细胞形态学的影响 | 第112-114页 |
| 3.电子显微镜观察药物对色素瘤细胞超微结构的影响 | 第114-115页 |
| 4.免疫组化方法检测药物对黑色素瘤细胞VEGF表达的影响 | 第115-117页 |
| 5.免疫组化方法检测药物对黑色素瘤细胞E-cadherin表达的影响 | 第117-118页 |
| 6.TUNEL法检测药物诱导黑色素瘤细胞凋亡的作用 | 第118-121页 |
| 7.原位杂交法检测药物对黑色素瘤细胞nm23含量的影响 | 第121-123页 |
| 讨论 | 第123-126页 |
| 参考文献 | 第126-130页 |
| 第二部分 MDAMB435及MV3细胞转染nm23的体外实验研究 | 第130-156页 |
| 前言 | 第130页 |
| 材料及方法 | 第130-133页 |
| 实验结果 | 第133-148页 |
| 1.MDAMB435及MV3细胞转染nm23基因 | 第133-134页 |
| 2.流式细胞术对转染细胞的鉴定 | 第134-135页 |
| 3.免疫组织化学法对转染细胞的鉴定 | 第135-137页 |
| 4.转染及未转染MDAMB435及MV3细胞增殖速度比较 | 第137-138页 |
| 5.转染及未转染MDAMB435及MV3细胞形态比较 | 第138-139页 |
| 6.转染及未转染MDAMB435及MV3细胞集落形成比较 | 第139-142页 |
| 7.转染及未转染MDAMB435及MV3细胞管腔形成比较 | 第142-145页 |
| 8.转染及未转染MDAMB435及MV3细胞粘附能力比较 | 第145-146页 |
| 9.转染及未转染MDAMB435侵袭能力比较 | 第146-147页 |
| 10.转染及未转染MV3细胞分泌黑色素能力比较 | 第147-148页 |
| 讨论 | 第148-151页 |
| 参考文献 | 第151-156页 |
| 论文综述 | 第156-174页 |
| 致谢 | 第174-176页 |
| 在学期间发表的论文 | 第176页 |
