中文摘要 | 第1-5页 |
英文摘要 | 第5-12页 |
第一章 生物稳定性聚氨酯材料研究进展 | 第12-45页 |
1.1 生物稳定性问题的提出 | 第12-13页 |
1.2 聚氨酯材料的特点 | 第13-15页 |
1.3 医用聚氨酯材料的历史和现状 | 第15-20页 |
1.4 聚氨酯的体内降解机理研究进展 | 第20-29页 |
1.4.1 聚醚聚氨酯的氧化机理研究 | 第20-26页 |
1.4.1.1 环境应力开裂(ESC) | 第21-24页 |
1.4.1.2 金属粒子氧化降解(MIO) | 第24-26页 |
1.4.2 聚氨酯酶解研究 | 第26-28页 |
1.4.3 降解机理总结 | 第28-29页 |
1.5 生物稳定性聚氨酯材料研究进展 | 第29-33页 |
1.5.1 Medtronic全脂肪族生物稳定性聚氨酯 | 第29-30页 |
1.5.2 聚碳酸酯型聚氨酯 | 第30-31页 |
1.5.3 含硅封端剂的生物稳定性聚氨酯 | 第31-32页 |
1.5.4 以维生素E作抗氧剂的“生物稳定性”聚氨酯 | 第32页 |
1.5.5 其它生物稳定性聚氨酯材料 | 第32-33页 |
1.6 本章小结 | 第33-34页 |
1.7 本研究工作的设想 | 第34-36页 |
1.8 参考文献 | 第36-45页 |
第二章 脂肪族聚碳酸酯二元醇的合成和表征 | 第45-73页 |
2.1 前言 | 第45页 |
2.2 实验和方法 | 第45-47页 |
2.2.1 原料 | 第45-46页 |
2.2.2 聚碳酸酯二元醇的合成 | 第46页 |
2.2.3 脂肪族聚碳酸酯的结构与性能的表征 | 第46-47页 |
2.2.3.1 化学结构表征 | 第46页 |
2.2.3.2 羟值和分子量 | 第46页 |
2.2.3.3 材料表面和本体性能 | 第46-47页 |
2.2.4 副反应研究 | 第47页 |
2.2.4.1 馏出液气相色谱分析 | 第47页 |
2.2.4.2 用模型反应进行副反应研究 | 第47页 |
2.3 结果与讨论 | 第47-66页 |
2.3.1 脂肪族聚碳酸酯的合成 | 第47-49页 |
2.3.2 脂肪族聚碳酸酯结构 | 第49-54页 |
2.3.2.1 脂肪族聚碳酸酯的分子量测定和羟基官能度 | 第49-50页 |
2.3.2.2 脂肪族聚碳酸酯的化学结构 | 第50-54页 |
2.3.3 副反应机理研究 | 第54-66页 |
2.3.3.1 反应馏出液的色谱分析结果 | 第54-60页 |
2.3.3.2 模型反应的色谱分析结果 | 第60-62页 |
2.3.3.3 副反应机理 | 第62-65页 |
2.3.3.4 合成工艺总结 | 第65-66页 |
2.4 脂肪族聚碳酸酯二醇的性能 | 第66-70页 |
2.4.1 聚碳酸酯二醇与聚醚二醇和聚酯二醇的比较 | 第66-67页 |
2.4.2 脂肪族聚碳酸酯二醇的结晶性 | 第67页 |
2.4.3 热性能--DSC研究 | 第67-70页 |
2.5 本章小结 | 第70-71页 |
2.6 参考文献 | 第71-73页 |
第三章 聚碳酸酯聚氨酯弹性体的合成与性能研究 | 第73-88页 |
3.1 前言 | 第73-74页 |
3.2 实验部分 | 第74-75页 |
3.2.1 原料 | 第74页 |
3.2.2 聚碳酸酯聚氨酯的合成 | 第74页 |
3.2.3 硬段模型化合物的合成 | 第74页 |
3.2.4 聚碳酸酯聚氨酯的测试 | 第74-75页 |
3.2.5 硬段模型化合物的测试 | 第75页 |
3.3 结果与讨论 | 第75-84页 |
3.3.1 合成工艺 | 第75-76页 |
3.3.2 聚碳酸酯聚氨酯的红外光谱 | 第76-79页 |
3.3.3 聚碳酸酯聚氨酯的X射线衍射分析结果 | 第79-80页 |
3.3.4 聚碳酸酯聚氨酯的微相分离结构—DSC分析 | 第80-83页 |
3.3.5 聚碳酸酯聚氨酯力学性能 | 第83-84页 |
3.4 本章小结 | 第84-85页 |
3.5 参考文献 | 第85-88页 |
第四章 氟碳化合物封端的聚碳酸酯聚氨酯弹性体的合成及表征 | 第88-116页 |
4.1 前言 | 第88页 |
4.2 实验和方法 | 第88-92页 |
4.2.1 实验原料 | 第88-89页 |
4.2.2 氟碳化合物(PDFOL)封端的聚氨酯的合成 | 第89页 |
4.2.2.1 PDFOL封端的聚醚型聚氨酯合成 | 第89页 |
4.2.2.2 PDFOL封端的聚碳酸酯型聚氨酯合成 | 第89页 |
4.2.3 测试 | 第89-92页 |
4.2.3.1 分子量测试 | 第89-90页 |
4.2.3.2 聚氨酯膜材的制备 | 第90页 |
4.2.3.3 接角虫角测试 | 第90页 |
4.2.3.4 X-光电子能谱分析(XPS) | 第90-91页 |
4.2.3.5 元素分析 | 第91页 |
4.2.3.6 氟元素测定 | 第91-92页 |
4.2.3.7 DSC测试 | 第92页 |
4.2.3.8 力学性能测试 | 第92页 |
4.3 结果与讨论 | 第92-113页 |
4.3.1 PDFOL封端聚氨酯的合成工艺和本体氟元素含量 | 第92-98页 |
4.3.2 氟碳化合物封端聚氨酯的分子量 | 第98页 |
4.3.3 表面性能—接触角测试 | 第98-99页 |
4.3.4 本体元素含量 | 第99-100页 |
4.3.5 氟碳化合物封端的聚碳酸酯聚氨酯的表面结构 | 第100-111页 |
4.3.6 热性能—DSC分析 | 第111-112页 |
4.3.7 力学性能 | 第112-113页 |
4.4 本章小结 | 第113-114页 |
4.5 参考文献 | 第114-116页 |
第五章 聚碳酸酯聚氨酯及其氟碳化合物封端聚合物的血液相容性研究 | 第116-128页 |
5.1 前言 | 第116页 |
5.2 实验材料和方法 | 第116-119页 |
5.2.1 溶血试验 | 第116-118页 |
5.2.1.1 材料 | 第116-117页 |
5.2.1.2 试剂 | 第117页 |
5.2.1.3 方法 | 第117-118页 |
5.2.2 体外动态凝血时间试验 | 第118页 |
5.2.2.1 材料 | 第118页 |
5.2.2.2 评价方法 | 第118页 |
5.2.3 体外动态血栓形成试验 | 第118-119页 |
5.2.3.1 工业用聚氯乙烯管的处 | 第118页 |
5.2.3.2 试验材料 | 第118-119页 |
5.2.3.3 评价方法 | 第119页 |
5.2.4 体外静态血小板粘附试验 | 第119页 |
5.3 结果与讨论 | 第119-126页 |
5.3.1 溶血性 | 第119-120页 |
5.3.2 动态凝血时间 | 第120-122页 |
5.3.3 体外动态血栓形成 | 第122页 |
5.3.4 体外静态血小板粘附形态和数量 | 第122-126页 |
5.4 本章小结 | 第126-127页 |
5.5 参考文献 | 第127-128页 |
第六章 氟碳化合物封端的聚碳酯聚氨酯生物稳定性的评价 | 第128-140页 |
6.1 前言 | 第128页 |
6.2 实验材料和方法 | 第128-130页 |
6.2.1 实验材料 | 第128-129页 |
6.2.2 预拉伸聚氨酯样品的制备 | 第129页 |
6.2.3 耐氧化性测试—玻璃棉-H_2O_2/CoCl_2体系 | 第129-130页 |
6.2.4 体外酸性水解老化试验 | 第130页 |
6.2.5 分子量测试 | 第130页 |
6.2.6 XPS分析 | 第130页 |
6.3 结果与讨论 | 第130-138页 |
6.3.1 玻璃棉-H_2O_2/CoCl_2老化后表面形貌 | 第130-132页 |
6.3.2 水解老化后表面形貌 | 第132-134页 |
6.3.3 体外老化后分子量的变化 | 第134页 |
6.3.4 体外老化后表面化学结构的变化 | 第134-136页 |
6.3.5 氟碳端基提高生物稳定性的机理 | 第136-138页 |
6.4 本章小结 | 第138-139页 |
6.5 参考文献 | 第139-140页 |
第七章 全文总结 | 第140-143页 |
7.1 主要结论 | 第140-142页 |
7.2 本研究的创新点 | 第142页 |
7.3 需进一步研究的问题 | 第142-143页 |
致谢 | 第143-144页 |
作者在论文工作期间发表的论文 | 第144-145页 |
BIBLIOGRAPHY | 第145-160页 |
符号与缩语表 | 第160-161页 |