摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-8页 |
1 引言 | 第8-15页 |
·体细胞胚胎发生概况及意义 | 第8-9页 |
·体细胞胚胎发生的形态学和细胞组织学研究 | 第9-10页 |
·体细胞胚胎发生的形态学研究 | 第9页 |
·体细胞胚胎发生的细胞组织学研究 | 第9-10页 |
·植物调节物质与体胚发生的关系 | 第10-14页 |
·植物调节物质与胚性及非胚性愈伤组织的关系 | 第11页 |
·激素对体胚发生和发育的调节 | 第11-14页 |
·生长素 | 第11-12页 |
·细胞分裂素 | 第12页 |
·脱落酸 | 第12-13页 |
·多胺 | 第13-14页 |
·沙地云杉体细胞胚胎发生研究目的和意义 | 第14-15页 |
2 材料与方法 | 第15-19页 |
·材料表面灭菌及其培养条件 | 第15页 |
·材料来源 | 第15页 |
·外植体处理及培养条件 | 第15页 |
·沙地云杉愈伤组织诱导及生长指标测定 | 第15-16页 |
·胚性愈伤组织诱导 | 第15页 |
·体细胞胚胎发生 | 第15-16页 |
·沙地云杉体细胞胚胎发生过程的超微结构观察方法 | 第16页 |
·沙地云杉体细胞胚胎成熟过程中超氧化物歧化酶(SOD)酶活性测定方法 | 第16-17页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)样品制备及处理 | 第16页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)试剂 | 第16页 |
·酶液提取 | 第16-17页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)测定步骤 | 第17页 |
·计算公式 | 第17页 |
·沙地云杉体细胞胚胎成熟过程中过氧化物酶(POD)酶活性测定方法 | 第17-18页 |
·试剂 | 第17-18页 |
·酶液提取 | 第18页 |
·计算公式 | 第18页 |
·沙地云杉体细胞胚胎发生过程中测定多胺材料与方法 | 第18-19页 |
·测定多胺样品制备及处理 | 第18页 |
·多胺的提取和处理 | 第18-19页 |
·仪器与试剂 | 第19页 |
·光谱条件 | 第19页 |
3 结果与分析 | 第19-31页 |
·沙地云杉初始愈伤组织诱导培养基筛选 | 第19-20页 |
·2,4-D 和6-BA 的不同浓度组合对沙地云杉愈伤组织诱导的影响 | 第20-21页 |
·不同浓度的ABA 与PEG4000 对沙地云杉胚性愈伤组织分化的影响 | 第21-22页 |
·沙地云杉体细胞胚胎发生过程的超微结构观察结果 | 第22-23页 |
·沙地云杉体细胞胚胎成熟过程中的酶活性分析 | 第23-24页 |
·沙地云杉体细胞胚胎成熟过程中SOD 活性变化 | 第23-24页 |
·沙地云杉体细胞胚胎成熟过程中POD 活性变化 | 第24页 |
·多胺在沙地云杉体细胞胚胎发育过程中的影响 | 第24-31页 |
·线性范围和检出限 | 第24-25页 |
·沙地云杉体胚发生中内源多胺变化及外源PUT 对内源多胺含量的影响 | 第25-28页 |
·PUT 含量变化 | 第25-26页 |
·SPD 含量变化 | 第26-27页 |
·SPM 含量变化 | 第27页 |
·PUT/SPD 和PUT/SPM 变化及总多胺变化 | 第27-28页 |
·外源MGBG 对沙地云杉体胚发生和内源多胺含量的影响 | 第28-29页 |
·PUT 含量变化 | 第28-29页 |
·SPD 含量变化 | 第29页 |
·SPM 含量变化 | 第29页 |
·外源CHA 对沙地云杉体胚发生和内源多胺含量的影响 | 第29-31页 |
·PUT 含量变化 | 第29-30页 |
·SPD 含量变化 | 第30页 |
·SPM 含量变化 | 第30-31页 |
4. 讨论 | 第31-33页 |
·2,4-D 和6-BA 的不同浓度组合对沙地云杉愈伤组织诱导的影响 | 第31页 |
·不同浓度的ABA 与PEG4000 对沙地云杉胚性愈伤组织分化的影响 | 第31-32页 |
·沙地云杉体细胞胚胎成熟过程中酶活性变化 | 第32-33页 |
·多胺在沙地云杉体细胞胚胎发育过程中的影响 | 第33页 |
5 结论 | 第33-36页 |
参考文献 | 第36-40页 |
图版及图版说明 | 第40-42页 |
致谢 | 第42-43页 |
作者简介 | 第43页 |