| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-28页 |
| ·引言 | 第12-13页 |
| ·CoQ_(10)的结构与理化性质 | 第13页 |
| ·物理性质 | 第13页 |
| ·化学结构 | 第13页 |
| ·自然界中CoQ_(10)的含量 | 第13-14页 |
| ·CoQ_(10)的生理功能和应用 | 第14-17页 |
| ·CoQ_(10)生理功能 | 第14-15页 |
| ·抗氧化功能 | 第14页 |
| ·自由基清除功能 | 第14页 |
| ·稳定生物膜功能 | 第14-15页 |
| ·对穿透膜功能的影响 | 第15页 |
| ·CoQ_(10)的应用 | 第15-17页 |
| ·心肌保护 | 第15页 |
| ·治疗呼吸肌疲劳 | 第15页 |
| ·治疗冠心病 | 第15-16页 |
| ·治疗高血压 | 第16页 |
| ·治疗乙型脑炎 | 第16页 |
| ·治疗慢性肝炎 | 第16页 |
| ·治疗乳腺癌 | 第16页 |
| ·免疫力增强 | 第16页 |
| ·其他应用 | 第16-17页 |
| ·CoQ_(10)的生产方法 | 第17-19页 |
| ·化学合成法 | 第17页 |
| ·动植物组织提取法 | 第17-18页 |
| ·植物细胞培养法 | 第18页 |
| ·微生物发酵法 | 第18-19页 |
| ·CoQ_(10)的生物合成途径 | 第19-20页 |
| ·CoQ_(10)发酵条件的优化 | 第20-22页 |
| ·CoQ_(10)分离与纯化 | 第22-23页 |
| ·茄尼醇的结构与理化性质 | 第23-24页 |
| ·物理性质 | 第23-24页 |
| ·化学结构 | 第24页 |
| ·废烟叶来源茄尼醇的分离制备 | 第24-26页 |
| ·茄尼醇为原料生产CoQ_(10) | 第26页 |
| ·茄尼醇为前体生产其他新药 | 第26-27页 |
| ·研究内容、研究意义及创新点 | 第27-28页 |
| ·研究内容 | 第27页 |
| ·研究意义 | 第27页 |
| ·创新点 | 第27-28页 |
| 第二章 高纯度茄尼醇的提取工艺研究 | 第28-42页 |
| ·实验材料 | 第28-30页 |
| ·原料来源 | 第28-29页 |
| ·化学药品 | 第29页 |
| ·主要仪器设备 | 第29-30页 |
| ·主要试剂 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-32页 |
| ·检测方法 | 第30页 |
| ·标准曲线的制作 | 第30页 |
| ·样品溶液的配制 | 第30页 |
| ·原料预处理 | 第30页 |
| ·粗品提取溶剂的选择 | 第30页 |
| ·浸膏脱蜡溶剂的选择 | 第30-31页 |
| ·皂化条件的单因素试验 | 第31-32页 |
| ·皂化时间对茄尼醇提取的影响 | 第31页 |
| ·碱液用量对茄尼醇提取的影响 | 第31页 |
| ·皂化温度对茄尼醇提取的影响 | 第31-32页 |
| ·析晶 | 第32页 |
| ·乙腈重结晶 | 第32页 |
| ·茄尼醇重结晶样品鉴定 | 第32页 |
| ·实验结果 | 第32-40页 |
| ·高效液相色谱测定茄尼醇含量的标准曲线 | 第32-33页 |
| ·粗品提取溶剂的选择 | 第33页 |
| ·脱蜡溶剂的选择 | 第33页 |
| ·皂化条件的单因素 | 第33-34页 |
| ·皂化时间的影响 | 第33-34页 |
| ·碱液用量的影响 | 第34页 |
| ·皂化温度的影响 | 第34页 |
| ·析晶 | 第34-35页 |
| ·重结晶 | 第35页 |
| ·茄尼醇提取过程各步纯度和收率的变化 | 第35页 |
| ·高效液相色谱测定茄尼醇含量的谱图 | 第35-36页 |
| ·重结晶样品鉴定结果 | 第36-40页 |
| ·重结晶样品的TLC图 | 第36-37页 |
| ·重结晶样品的IR图谱 | 第37-38页 |
| ·重结晶样品NMR图谱 | 第38-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 SPHINGOMONAS SP.ZUTE03辅酶Q_(10)发酵工艺及分离纯化的研究 | 第42-61页 |
| ·实验材料 | 第43-45页 |
| ·菌种 | 第43页 |
| ·化学药品 | 第43页 |
| ·主要仪器设备 | 第43-44页 |
| ·主要试剂 | 第44-45页 |
| ·培养基 | 第45页 |
| ·实验工艺路线 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-49页 |
| ·CoQ_(10)发酵液残糖和CoQ_(10)的检测方法 | 第45-46页 |
| ·葡萄糖标准曲线的制作 | 第45-46页 |
| ·CoQ_(10)发酵液残糖的测定 | 第46页 |
| ·CoQ_(10)的HPLC检测 | 第46页 |
| ·HPLC法测CoQ_(10)标准曲线的制作 | 第46页 |
| ·初始葡萄糖浓度的确定 | 第46-47页 |
| ·初始葡萄糖浓度15g/L的发酵过程 | 第46-47页 |
| ·不同初始葡萄糖浓度对CoQ_(10)产量影响 | 第47页 |
| ·葡萄糖补加浓度对CoQ_(10)发酵影响 | 第47页 |
| ·发酵过程中pH控制对CoQ_(10)产量的影响 | 第47页 |
| ·Sphingomonas sp.ZJUTE03 5L发酵罐中发酵产辅酶Q_(10) | 第47页 |
| ·不同CoQ_(10)提取工艺比较 | 第47-48页 |
| ·醇碱皂化提取工艺 | 第47-48页 |
| ·超声波破壁提取工艺 | 第48页 |
| ·CoQ_(10)的HPLC鉴定 | 第48-49页 |
| ·CoQ_(10)的分离纯化 | 第49页 |
| ·CoQ_(10)的硅胶柱分离纯化 | 第49页 |
| ·洗脱液的薄层层析 | 第49页 |
| ·实验结果 | 第49-60页 |
| ·葡萄糖标准曲线的制作 | 第49-50页 |
| ·HPLC法测CoQ_(10)标准曲线的制作 | 第50-51页 |
| ·初始葡萄糖浓度的确定 | 第51-55页 |
| ·初始葡萄糖浓度15g/L的发酵过程 | 第51-52页 |
| ·不同初始葡萄糖浓度对CoQ_(10)产量影响 | 第52-55页 |
| ·葡萄糖补加浓度对CoQ_(10)发酵影响 | 第55页 |
| ·发酵过程中pH控制对CoQ_(10)产量的影响 | 第55-56页 |
| ·Sphingomonas sp.ZJUTE03 5L发酵罐中发酵产辅酶Q_(10) | 第56-57页 |
| ·不同提取工艺对CoQ_(10)产量的影响 | 第57-58页 |
| ·CoQ_(10)的HPLC鉴定 | 第58-59页 |
| ·CoQ_(10)的分离纯化 | 第59-60页 |
| ·结论 | 第60-61页 |
| 第四章 茄尼醇粗提物的分离纯化及其辅酶Q_(10)发酵促进作用研究 | 第61-72页 |
| ·实验材料 | 第61-63页 |
| ·菌种 | 第61页 |
| ·化学药品 | 第61-62页 |
| ·主要仪器设备 | 第62-63页 |
| ·主要试剂 | 第63页 |
| ·培养基 | 第63页 |
| ·实验方法 | 第63-65页 |
| ·检测方法 | 第63页 |
| ·原料制备 | 第63页 |
| ·茄尼醇粗品的制备 | 第63页 |
| ·茄尼醇皂化物制备 | 第63-64页 |
| ·茄尼醇粗品和皂化品添加对Sphingomonas sp.ZUTE03发酵产CoQ_(10)影响 | 第64页 |
| ·茄尼醇粗品的硅胶柱分离 | 第64页 |
| ·不同组分物质的添加效果研究 | 第64页 |
| ·CoQ_(10)发酵最佳促进组分的分离纯化初探 | 第64-65页 |
| ·实验结果 | 第65-71页 |
| ·茄尼醇粗品及其皂化物中的茄尼醇含量分析 | 第65-66页 |
| ·茄尼醇粗品和皂化品添加对Sphingomonas sp.ZUTE03发酵产CoQ_(10)影响 | 第66页 |
| ·茄尼醇粗品的硅胶柱分离 | 第66-67页 |
| ·不同组分物质的添加效果研究 | 第67-68页 |
| ·CoQ_(10)发酵最佳促进组分的分离纯化初探 | 第68-69页 |
| ·CoQ_(10)发酵最佳组分中主要组分的GC-MS检测 | 第69-71页 |
| ·结论 | 第71-72页 |
| 第五章 实验总结与展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 研究生阶段发表论文情况 | 第82页 |
